иннервации различных типов мышечных волокон

Иннервация быстрых волокон. Быстрые волокна иннервируются ветвями одиночных аксонов двигательных нервов. При этом ин-нервируется небольшое число мышечных во­локон. Заканчиваются аксоны двигательной бляшкой (нервно-мышечный синапс) [174, 277] (рис. 2.8.16), по строению напоминающей дви­гательные бляшки скелетной мышцы. Синапти-ческая мембрана обладает многочисленными складками, а терминальная часть аксонов на­сыщена синаптическими пузырьками, содержа­щими холинэстеразу [38, 39, 51, 244, 245].

Двигательные бляшки распределеляются в области дистальной средней трети брюшка мышцы шириной 1—2 мм [51].

152

Глава 2. ГЛАЗНИЦА И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЙ АППАРАТ ГЛАЗА

 

Рис. 2.8.16. Светооптические особенности двигатель­ных   нейромышечных соединений наружных мышц глаза (по Cheng, 1963):

 

а — двигательная бляшка; б — «гроздевидные» нейромышечные соединения; в — спиралевидное окончание

 

При морфометрическом исследовании диа­метра аксонов двигательных нервов, подходя­щих к наружным мышам глаза, выявлено би­модальное распределение волокон с пиками в области 5 мкм и 11 мкм. Аксоны большего диаметра иннервируют быстрые волокна, а ма­ленького диаметра иннервируют «тонические» волокна.

 

Наружные мышцы глаза являются самыми быстрыми в организме человека (например, 7,5—10 мс для внутренней прямой мышцы по сравнению с 40 мс для gastrocnemius). Час­тота раздражения, необходимая для стимуля­ции слияния ответов мышцы, равняется 350— 450 Гц [146], а для gastrocnemius составляет всего 100 Гц. Скорость восстановления наруж­ных мышц глаза приблизительно в десять раз выше [145, 146].

 

Иннервация «тонических» волокон. «Тони­ческие» волокна иннервируются многочисленны­ми «гроздевидными» окончаниями (рис. 2.8.17) [23, 51, 104, 174, 244, 277]. Их двигательные

 

Рис. 2.8.17. Особенности двигательных нервных окон­чаний наружных мышц глаза (по Locket, 1978):

 

а — двигательное окончание в прямой мышце глаза (серебрение по Бильшовскому); б — схема двигательных окончаний мышеч­ного волокна малого диаметра; в —двигательное волокно мы­шечного волокна большого диаметра (/ — нервное волокно (мие-линовая оболочка исчезает при вхождении волокна в мышцу); 2 — нервные окончания, оплетающие ядра мышечных волокон; 3 — поперечная исчерченность мышечного волокна)

 

волокна меньшего диаметра, чем диаметр нерв­ных волокон, иннервирующих быстрые мышеч­ные волокона. Выявляются и структурные от­личия двигательных бляшек. Это, в первую очередь, относится к строению синаптических пузырьков. Синаптические пузырьки содержат зернистое содержимое, напоминающее таковое некоторых нервных окончаний вегетативной нервной системы. Правда, необходимо отме­тить, что обнаруживаются и синаптические пу­зырьки обычного строения.

 

Еще одним отличием является то, что между оболочкой нерва и сарколеммой нет базальной мембраны, обнаруживаемой в мышечном вере­тене и окончаниях вегетативной системы [39].

«Гроздевидные» окончания «тонических» волокон концентрируются преимущественно в дистальной трети мышцы [38], образуя при

Наружные мышцы глаза

153

 

этом группы, расстояние между которыми колеблется от 10 мкм до 2—3 мм. Mukuno [168—170] описал шесть типов двигательных бляшек, обнаруживаемых в наружных мышцах глаза человека.

Нервная стимуляция «тонических» мышеч­ных волокон приводит к медленному градуи­рованному их сокращению [66]. Частота реге­нерации равняется 200 Гц. При стимуляции с частотой 400 Гц скорость сокращения не уве­личивается.

В отличие от быстрых волокон в «тоничес­ких» волокнах после возбуждения происходит пассивное электротоническое распространение деполяризации поперек поверхности волокон. Потенциалы «гроздевидных» синапсов меньше, чем потенциалы двигательных бляшек, что свя­зывается с меньшим размером постсинаптичес-кой области и меньшим количеством высвобож­даемого медиатора.

Сенсорный аппарат

Наружных мышц глаза

Ранее предполагали, что чувствительные во­локна, берущие свое начало в наружных мыш­цах глаза, проходят к центральной нервной системе в составе глазодвигательного, блоково­го и отводящего нервов [251]. При этом они за­вершаются в нейронах ядра среднемозгового пути тройничного нерва (п. mesencephalicus п. trigemini). В настоящее время считают, что в глазодвигательном нерве проходит незначи­тельное количество центростремительных во­локон [189, 191; 192]. Рассечение глазного нерва обезьяны приводит к дегенерации лишь 0,9—2,7% аксонов нерва, идущих к нижней косой мышце [207—213].

Ряд исследователей зарегистрировали сен­сорные ответы у некоторых животных (овцы, кролика) в дорзолатеральнои части тройничного ганглия. При этом выявлена соматотопическая

зеркальная пространственная организация нерв­ных ответов, соответствующая объемному рас­положению структур глазницы [152—154]. Эти данные были подтверждены Porter, Guthrie, Sparks [191] при исследовании кошек и обезьян.

Нейроны первого порядка заканчиваются в чувствительных ядрах тройничного нерва, а также и спинномозговых ядрах. Нейроны вто­рого порядка проходят к покрышке и крыше, а также к вентролатеральному ядру зрительного бугра {п. uentrolateralis thalami).

Информацию эти волокна передают от сле­дующих типов рецепторов наружных мышц гла­за (рис. 2.8.18; табл. 2.8.5):

1. Мышечное веретено.

2. Сухожильные органы Гольджи.

3. Палисадоподобные окончания.

4. Спиральные нервные окончания.
Мышечное веретено. Строение мышечного

веретена скелетной мышцы описано в 1-й гла­ве. Здесь мы лишь напомним о нем, а затем остановимся на особенностях этих образований в наружных мышцах глаза.

Мышечные веретена в наружных мышцах глаза человека впервые описали Siernmerling [1888] и Buzzard [32], но длительное время эти наблюдения не подтверждались. Лишь благо­даря работам Daniel [49], Cooper, Daniel [45, 46], эти рецепторы вновь обнаружены и опи­саны многими исследователями [161, 162, 242, 259].

Мышечные веретена сконцентрированы вда­ли от средней трети брюшка мышцы, содержа­щей двигательные окончания. Наибольшее их количество в проксимальной (нижняя прямая мышца) и дистальной частях мышцы (верхняя косая мышца). Их можно обнаружить и в обе­их зонах [162]. Количество образований колеб­лется в одной мышце от 22 до 71. Blumer, Lukas, Aigner [22] выявили следующее коли­чество веретен в различных мышцах: во внут­ренней прямой 18,8 ±3,0; наружной прямой

Таблица 2.8.7. Чувствительные окончания наружных мышц глаза человека

Мышечный рецептор

Основная характеристика

 

A. Классическое мышечное веретено
Б. Атипичное мышечное веретено

B. Сухожильный орган Гольджи
Г. «Палисадные» окончания

Д. Спиральные окончания Простые Двойные

Е. Смешанные

Ж. Другие рецепторы (терминальная пластинка, напоминающая бутон цветка; древоподобные; щеткопо-добные; катушкоподобные оконча­ния. Луковицеобразное окончание

Расположены в передней и задней третях мышцы

Два нервных волокна инкапсулированы на экстрафузальном мышечном волокне кпереди зоны мышцы, иннервируемой двигательными бляшками Схож с сухожильным органом скелетных мышц. Расположен в сухо­жилии

Инкапсулированные нервные окончания в области соединения мышцы и сухожилия «глазной» зоны. Иннервируют мышечные волокна, содержа­щие многочисленные нервные окончания Все на экстрафузальных волокнах Неинкапсулированные; в средней трети мышц Неинкапсулированные. Иногда отдают многочисленные ветви Плохо изучены Обнаруживаются в соединительной ткани

154

Глава 2. ГЛАЗНИЦА И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЙ АППАРАТ ГЛАЗА

 

с ядерной цепочкой (окончания распыления цветка) (рис. 2.8.18, 2.8.19).

1-я группа   2-я группа афферентов афферентов Гамма-двига- /      , тельные (ста-/                  /

Гамма-двига­тельные (ди- намические)

Волокна с ядер­ным мешочком

8

Рис. 2.8.18. Сенсорный аппарат наружных мышц глаза (по Wolter, 1955):

а — щеткоподобные окончания; б—почкоподобные окончания; в — древоподобные окончания

19,3+ 1,9; в нижней прямой 34,0 ±4,4; в верх­ней косой 27,3 ±8,2; в нижней косой 4,3 ±1,8.

Мышечное веретено сообщает о скорости изменения длины мышцы. Оно представляет собой продолговатое тельце, окруженное со­единительнотканной капсулой. Содержит мы­шечное веретено до 11 интрафузальных мышеч­ных волокон небольшого диаметра (5—30 мкм) и длиной приблизительно 500 мкм [207]. Раз­мещены интрафузальные мышечные волокна параллельно экстрафузальным волокнам. Ядра интрафузальных волокон группируются дву­мя способами. В первом случае ядра лежат в центре, образуя ядерную сумку. Во втором случае они лежат линейно в виде цепочки (см. главу 1).

На интрафузальных волокнах имеются два типа чувствительных центростремительных окончаний: первичные окончания иннервируют как волокна с ядерной цепочкой, так и волокна с ядерной сумкой (морфологически относятся к аннулоспиральным окончаниям).

Второй тип окончаний (афференты группы II типа) иннервируют исключительно волокна

 

Первичное окончание

Вторичное  окончание

Волокна с ядерной цепочкой

Рис. 2.8.19. Мышечное веретено в интрафузальных волокнах различного типа (с ядерным мешком и ядер­ной цепочкой):

первая группа афферентов иннервирует как волокна с ядерным

мешочком, так и с ядерной цепочкой. Вторая группа афферентов

обычно иннервирует волокна с ядерной цепочкой

Сокращение экстрафузальных мышечных во­локон деформирует веретено, в результате чего и формируется нервный сигнал.

Афференты второго типа информируют цент­ральную систему о длине волокна, а афферен­ты первого типа — о длине и скорости измене­ния длины волокна. Гамма-волокна, направляю­щиеся к интрафузальным волокнам, управляют чувствительностью детектирования длины [34].

Fuchs и Kornhuber [77] предполагают, что мышечное веретено обеспечивает мозжечок ин­формацией относительно размера и конечных точек саккадических движений глаза. Они при­дают им также роль в фиксационном нистагме. Sears et al. [221] обнаружили доказательства того, что рецепторы растяжения мышцы подав­ляют двигательные нейроны наружных мышц глаза, расположенные в стволе мозга. Пред­полагают, что информация, идущая от мышеч­ного веретена, исправляет положение глаза при «пролете» глаза мимо зрительной цели.

Сухожильные органы Гольджи. Сухожиль­ные органы были описаны в скелетной мышце Golgi в 1880 г. Правда, он не обнаружил их в наружных мышцах глаза. В наружной мышце глаза человека эти чувствительные рецепторы описаны Marchi в 1882 г. [155].

Сухожильные органы Гольджи информиру­ют нервную систему о степени ригидности ске­летных мышц. В мышцах эти рецепторы лока­лизуются в сухожилии.

Сухожильные органы Гольджи в мышце гла­за имеют веретеновидную форму и исключи­тельно маленький размер [210]. Средний размер этих образований в мышце обезьяны составля-

Наружные мышцы глаза

155

 

ет 270x36 мкм, т.е. всего лишь третью часть аналогичных образований в скелетной мышце.

В скелетной мышце к сухожильному органу подсоединяются многочисленные мышечные во­локна, а в мышцах глаза только одно или два. Кроме того, в скелетной мышце один конец сухожильного органа расположен в мышце, а другой в сухожилии. В противоположность это­му в наружной мышце глаза человека все обра­зование располагается в сухожилии.

Капсула сухожильного органа Гольджи об­разована периневрием, окруженным цитоплаз-матическими отростками фибробластов. Пуч­ки коллагеновых волокон лежат обособленно. Между коллагеновыми волокнами распростра­няются нервные окончания.

Электронная микроскопия [161] сухожиль­ного органа Гольджи выявляет обычное распре­деление нервных окончаний, которые состоят из округлых нервных отростков, окруженных цитоплазмой шванновских клеток и выстлан­ных пучками коллагеновых волокон. Плазма­тическая мембрана нервных окончаний иногда непосредственно прилежит к коллагеновым во­локнам, а иногда между ними выявляется мате­риал, напоминающий материал базальной мем­браны. Между ними может находиться и цито­плазма шванновской клетки.

Палисадоподобные окончания. Палисадо-подобные окончания (миосухожильные цилинд­ры) являются основным чувствительным аппа­ратом наружных мышц глаза млекопитающих. Они состоят из скрытых нервных окончаний, находящихся в месте перехода мышцы в сухо­жилие (мышечно-сухожильные), переплетенных с мышечными волокнами. Richmond, Johnston, Baker [197], используя импрегнацию серебром мышц человека, описали их в виде сети мелких нервных волокон, оплетающих кончик экстра-фугального нервного волокна. Несколько сосед­них мышечных волокон иннервируются одним миелинизированным ветвящимся аксоном.

Чаще всего палисадообразные окончания об­наруживаются в горизонтальных прямых мыш­цах глаза. Несколько меньше их в вертикальных прямых мышцах и косых мышцах [209, 210; 11].

Сенсорная функция этих структур обеспе­чивается тем, что отсутствует базальная мем­брана между мышцей и нервом [209], а также наличием близкого контакта нервного и мышеч­ного волокон. Возбуждение окончаний, вероят­но, происходит в результате сжатия окончаний при мышечном сокращении.

Спиральные нервные окончания. Эти окон­чания выявляются в средней трети наружных мышц глаза. Спиральные окончания обматы­вают экстрафузальное мышечное волокно.

В настоящее время считают, что спиральные окончания в мышцах глаза выполняют двига­тельную функцию [211].

Одиночные спиральные окончания редки. Они делают 3—8 витков вокруг мышечного во-

локна и заканчиваются в структуре подобно концевой пластинке.

Более часто можно обнаружить спиралевид­ные окончания в виде двух волокон, распро­страняющихся во встречном направлении [49, 232]. Описаны и другие варианты строения этих образований.

2.8.8. Другие морфологические
особенности наружных
мышц глаза

В наружных мышцах глаза человека в норме обычно выявляются изменения, которые, если бы они были обнаружены в скелетной мышце, расценивались как патологические (миопатия или дегенерация). Сводятся они к обнаруже­нию вихреподобного расположения миофиб-рилл, вакуолей между миофибриллярными пуч­ками, различного типа включений, аномалий саркомеров, к смазыванию Z-линий и телец Хи-рано [106, 107, 156]. Кроме того, выявляются разнообразие в форме и размере мышечных во­локон, нарушение соотношения между волок­нами различного диаметра, наличие большого количества ядер и присутствие мононуклеар-ного инфильтрата [198, 199]. Причина подоб­ных изменений неизвестна.

Необходимо отметить, что при старении в наружных мышцах глаза отмечается потеря мы­шечных волокон 2-го типа, первоначально в «орбитальной», а затем и в «глазной» зоне. Позже уменьшается и количество волокон 1-го типа в «глазной» зоне [150].

2.8.9. Особенности реакции
наружных мышц глаза
на действие фармако­
логических средств

Мышечные волокна наружных мышц глаза отличаются от скелетных мышц фармакологи­ческими свойствами. Это, в первую очередь, касается действия миорелаксантов типа сукци-нилхолина. В скелетной мышце миорелаксанты обладают деполяризующим блокирующим свой­ством, нарушая нервно-мышечную передачу. В наружных мышцах глаза они выборочно ини­циируют мышечные волокна как «орбитальной», так и «глазной» зоне. Так, небольшие дозы препарата увеличивают регидность мышц. В то же время эти дозы не угнетают реакцию быст­рых волокон. Большие дозы сукцинилхолина увеличивают регидность «тонических» волокон и угнетают быстрые волокна. При этом миоре­лаксанты устанавливают глазное яблоко в пер­вичное положение во время общей анестезии.

Знание этих особенностей действия блокато-ров на наружные мышцы глаза имеет прак­тическое значение, поскольку эти препараты нередко используются при общей анестезии,

156

Глава 2. ГЛАЗНИЦА И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЙ АППАРАТ ГЛАЗА

 

а также в диагностике и лечении косоглазия. Дифференциальное влияние сукцинилхолина на «тонические» волокна, в частности, используют в клинике с целью прогнозирования возмож­ности правильной установки наружных мышц после хирургического вмешательства.

Нередко вводят в глазницу местные боле­утоляющие средства группы аминоацилов (ли-докаин). Эти препараты обладают миотоксичес-ким действием и могут привести к параличу мышцы. При инъекции указанных препаратов в паренхиму мышцы последние стимулируют высвобождение ионов кальция, приводя к раз­витию птоза или диплопии -во время оператив­ного вмешательства под местной анестезией.

В клинике используется также ботулиновый токсин, маленькие дозы которого при введении в наружные мышцы глаза изменяют их сокра­тимость. Ботулиновый токсин блокирует высво­бождение ацетилхолина в нейромышечное со­единение. Это свойство токсина используют в клинике для стимуляции наружных мышц глаза при косоглазии. При этом отмечается расслаб­ление леватора верхнего века и мышц лица, участвующих в дистонических нарушениях.

Инъекция ботулина в скелетную мышцу, включая круговую мышцу глаза, вызывает па­ралич, иногда приводящий к атрофии мышцы в результате ее химической денервации. Восста­новление функции мышц лица может произойти путем повышения функциональной активности мотонейронов (функциональная реиннервация) [190, 193]. К сожалению, подобного восстанов­ления наружных мышцах глаза не происходит.

Литература

{.Краснов M. J1. Элементы анатомии в клиничес­кой практике офтальмолога. — М.: Медгиз, 1952.— С. 106.

2. Смирнов В. Г. Индивидуальные различия глаз­
ной артерии и ее ветвей у человека // Архив анатомии,
гистологии и эмбриологии, 1985. — №3. — С. 61—67.

3. Abdel-Khalek L. М. К., Williamson. /., Lee W. К.
Morphological changes in the human conjunctival epi­
thelium. I in the normal elderly population // Br J
Ophthalmol. — 1973. —Vol. 62. — P. 792.

4. Adams A. D. The morphology of human conjunc­
tival mucus // Arch Ophthalmol. — 1979. — Vol. 97. —
P. 730—734.

5.Adenis J. P., Robert P.Y., Boncoer-Martel M. P. Anatomie des glandes et des voies lacrymales Encicl Med Chir (Efsevier, Paris) // Ophtalmologie—1997.

6. Allansmith M. R., Greiner J. V., Baird R. S. Num­
ber of inflammatory cells in the normal conjunctiva //
Am J Ophthalmol. — 1978. — Vol. 86. — P. 250—262.

7. Allansmith M. R., Kajiyama G., Abelson M. B.
Plasma cell content of main and accessory lacrimal
glands and conjunctiva // Am J Ophthalmol. — 1976. —
Vol. 82.— P. 819—827.

8. Allansmith M. R., O'Connor G. R. Immunoglobu-
lins: Structure function and relation to the eye // Sur­
vey Ophthalmol. — 1970. — Vol. 14. — P. 367—402.

9. Allen M., Wright P., Reid L. The human lacrimal
gland. A histochemical and organ culture study of the

secretory cells//Arch Ophthalmol. — 1972.— Vol. 88.— P. 493—502.

10. Alvarado J. A., Van Horn С Muscle cell types of
the cat inferior oblique. In Lennerstrand G., Bach-y-Rita
P. (eds): Basic Mechanisms of Ocular Motility Oxford
Pergamon Press, 1975.— P. 15—45.

11. Alvarado-Mallart R. M., Pincon-Raymond M. The
palisade endings of the cat extraocular muscles, a light
and electron microscopic study // Tissue Cell. — 1979. —
Vol. 11. —P. 567—575.

12. Anderson R. L., Beard C. The levstor aponevrosis
attachments and their clinical significancce // Arch
Ophthalmol. — 1977.— Vol. 95. — P. 1437—1446.

13. Asmussen G., Kiessling A., Wohlrab F. Histoche­
mical characteristics of muscle fibre types in the mam­
malian extraocular muscles // Acta Anat.— 1971.—
Vol. 79. — P. 526—533.

14. Barmack N. H. Laminar organization of the extra­
ocular muscle of the rabbit // Exp Neurol. — 1978. —
Vol. 59.— P. 304—312.

15. Barnard J., Edgerton V.R., Furukawa Т., Pe­
ter J. B. Histochemical biochemical and contractile pro­
perties of red, white and intermediate fibers // Am J
Physiol. — 1971.— Vol. 220.— P. 410—419.

16. Bergen M. P. A spatial reconstruction of the
orbital vascular pattern in relations with the connective
tissue system //Acta Morphol Neerl Scand.— 1982. —
Vol. 20.— P. 117—125.

17. Bergen M. P. Microvessels in the human orbit in
relation to the connective tissue system // Acta Morphol
Neerl Scand.—1982.—Vol. 20. — P. 139—147.

18. Bergen M. P. Relationship between the arteries
and veins and the connective tissue system in the
human orbit,  Parts I, II, III // Acta Morphol Neerl
Scand. — 1982.—Vol. 28. — P. 1 — 12.

19. Bergen M. P., Los J. A. Vascular patterns in the
human orbit in relation to the connective tissue septa //
In Proceedings of the 3rd International Symposium on
Orbital Disorders Amsterdam, 1977. — P. 197—201.

20. Berthelot J. L., Hureau J. Clinical anatomical
study of the macroscopic anastomose of the ophthalmic
artery in the periorbital region // Anat Clin. — 1982. —
Vol. 3. — P. 271—278.

2\.Bhan A. K-, Fujikawa L. S., Foster С S. T. cells subsets and Langerhans cells in normal and diseased conjuntiva // Am J. Ophthalmol. — 1982. — Vol. 94. — P. 205—212.

22. Blumer R., Lukas J. R., Aigner M. Fine structural
analysis of extraocular muscle spindles of a two-year-old
human infant // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1999. —
Vol. 40. — P. 55—64.

23. Bormioli S. P., Sartore S., Vitadclio M. «Slow»
myosins in vertebrate skeletal muscle // J Cell Biol. —
1975.—Vol. 85.— P. 672681.

24. Bracard S., Roland J., Picard L. La vascularisa-
tion arterielle de l'orbite. In Variation des arteres de
l'encephale // Documentation du Laboratoire Guebert.—
1987.— P. 51—81.

25. Brandt D. E., Leeson C. R. Structural differences
of fast and slow fibers in human extraocular muscle //
Am J Ophthalmol. — 1973.— Vol. 62. — P. 478—486.

26.Bridger M. W.M., Van Nostrand A. W.P. The nose and paranasal sinuses-applied surgical anatomy // J Otolaryngol. — 1978. — Vol. 7 (Suppl 6). — P. 2—11.

27. Brismar J. Orbital phlebography III Topography
of intra-orbital veins // Acta Radial Suppl. — 1974. —
Vol. 15.— P. 577—586.

28. Bron A. J. Lacrimal streams. The demonstra­
tion of lacrimal fluid secretion and the lacrimal ductules
// Br J Ophthalmol. — 1986.—Vol. 70. — P. 241 —
27—49.

Литература

157

 

29. Bron A.]., Goldberg M.F. Clinical Features
of the Human Limbus // VI European Congress of
Ophthalmology Brighton Proc R Soc Med, 1980. —
Vol. 1. —P. 15—22.

30. Bron A. J., Mengher L. S., Davey С. С The nor­
mal conjunctiva and its responses to inflamation. Trans
// Ophtalmol Soc UK. — 1985. — Vol. 104. — P. 424—
435.

31. Brooke M. H., Kaiser К. К. Muscle fibre types:
how many and what kind? // Arch Neurol. — 1970. —
Vol. 23. — P. 369—380.

32. Buzzard F. A note on the occurrence of muscle
spindles in ocular muscles // Proc R Soc Med. —
1908.— Vol. 1. —P. 83—92.

33. Cares H. L., Bakay L. The clinical significance
of the optic strut // J Neurosurg. — 1971. — Vol. 34. —
P. 355—364.

34. Carew T. /., Ghez C. Receptors in Principles
of Neural Science / Eds E. R. Kandel, J. H. Swartz. —
Elsevier, New Jork, 1985.— 193 p.

35. Chaflin J., Putterman A. M. Muller's muscle
excision and levator recession in retracted upper lid:
treatment of thyroid-related retraction // Arch Ophthal-
mol. — 1979. — Vol. 97. — P. 1487—1496.

36. Charpy A. Le coussiner adipeux du soursil //
Bibl. Anat. — 1909. — Vol. 19. — P. 47.

37. Chavis R.M., Welham R.A.N., Maisey M. N.
Quantitative lacrimal scintillography // Arch Ophthal-
mol. — 1978. — Vol. 96. — P. 2066—2075.

38. Cheng K. Cholinesterase activity in human extra-
ocular muscles // Jpn J Ophthalmol. — 1963. — Vol. 7. —
P. 174—183.

39. Cheng K., Breinin G. M. A comparison of the fine
structure of extraocular and interosseous muscles in
the monkey // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1966. —
Vol. 5. — P. 535—544.

40. Cheng K-, Breinin G. M. Fine structure of nerve
endings of extraocular muscle // Arch Ophthalmol. —
1966.— Vol. 74.— P. 822—831.

41. Cheng-Minoda K., Davidowitz /., Liebowitz A.,
Breinin G. M. Fine structure of extraocular muscle in
rabbit // J Cell Biol. — 1968. — Vol. 39. — P. 193—201.

M.Chung CD., Tigges AT, Stone R. A. Peptid-ergic innervstion of the primate meibomian gland // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. — 1996. — Vol. 37.— P. 238—247.

43. Cilimbaris P. A. Histologische untersuchungen
uber die muskelspindein der augenmuskein // Arch
Microsk Anat. — 1910. — Vol. 75. — P. 692—701.

44. Collin J. R. O., Beard C, Wood I. Terminal
course of nerve supply to Muller's musce in the rhesus
monkey and its clinical significance // Am J Ophthal­
mol. — 1979. — Vol. 87. — P. 234—243.

45. Cooper E.R.A., Daniel P.M., Wilitteridge D.
Afferent impulses in the oculomotor nerve from the ext­
rinsic eye muscles // J Physiol. — 1951. — Vol. 113. —
p. 463—475.

46. Cooper S., Daniel P. M. Muscle spindles in human
extrinsic eye muscles // Brain. — 1949. — Vol. 72. —
P. 1—24.

47. Cordier /., Rauber C, Raspiller A., George J. L.
Vascularisation arterielle des muscles droits verticaus et
des muscles obliques // J. Fr. Ophtalmol.— 1981.—
Vol. 4. — P. 397—404.

48. Cordier J., Rauber G., Raspiller A., Sirbat D.
Vascularisation arterielle des muscles droits, interne
et externe // J. Fr. Ophtalmol. — 1980. — Vol. 3.—
P. 731—738.

49. Daniel P. Spiral nerve endings in the extrinsic
eye muscles of man // J Anat.— 1946. — Vol. 80.—
P. 189—198.

 

50. Davidowitz J., Philips G., Breinin G. M. Organi­
zation of the orbital surface layer in rabbit superior rec-
tus // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1977. — Vol. 16. —
P. 711—723.

51. Dieted S. E. The demonstration of different types
of muscle fibers in human extraocular muscle by elec­
tron microscopy and cholinesterase staining // Invest.
Ophthalmol. Vis. Sci. — 1965. — Vol. 4. — P. 51—60.

52. Ditenge D., Fischgold H., David M. L'Artere
ophtalmique, aspects angiographiques // Neurochirur-
gie. — 1961, — Vol. 7.— P. 240—252.

53. Dingman R. O., Peled /., lzenberg P. Forehead
and brow lifts and their relationship to blepharoplasty //
Ann Plast Surg. — 1979. — Vol. 2. — P. 32—41.

54. Dubowitz V., Fearae A. G. E. Reciprocal relation­
ship of phosphorylase and oxidative enzymes in skeletal
muscle // Nature. — 1960. — Vol. 185. — P. 701—710.

55. Dubowitz V., Pearse A. G. E. A comparative his-
tochemical study of oxidative enzyme and phosphorylase
activity in skeletal muscle // Histochemie.— 1960.—
Vol. 2.— P. 105—111.

56. Ducasse A., Delattre J. F., Segal A., Desphieux J. L.,
Flament J. B. Anatomical basis of the surgical approach
to the medial wall of the orbit // Anat Clin. — 1985. —
Vol. 7.— P. 15—21.

57. Ducasse A., Flament J. В., Segal A. Etude anato-
mique de la vascularisation des musckes obliques de
l'ael // Ophthalmolgie. — 1991. — Vol. 5. — P. 5—8.

58. Ducasse A., Segal A. Le contene orbitaire. Etude
anatomique des differents compartments et de leur con-
tenu // Ophthalmolgie. — 1992. — Vol. 6. — P. 180—
185.

59. Ducasse A., Segal A., Delattre J. F. Aspects
macrocopiques des arteres cillaires longues posterieu-
res // Bull Soc Ophtalmol Fr. — 1986. — Vol. 86.—
P. 845—848.

60. Ducasse A., Segal A., Delattre J. F., Burette A.
Les pedicules arteriels des muscles oculo-moteurs. Etude
anatomique de 70 orbites // Bull Mem Soc Fr Ophtal­
mol. — 1985. — Vol. 96.— P. 441—450.

61. Ducasse A., Segal A., Delattre J.F., Burette A.,
Flament J. B. La participation de l'artere carotide exter­
ne a la vascularisation orbitaire // J Fr Ophtalmol. —
1985.— Vol. 8.— P. 333—339.

62. Ducasse A., Segal A., Delattre I. F., Flament J. B.
Aspects macrocopiques de la vascularisation arterielle
orbitaire // Bull Soc Ophtalmol Fr. — 1989. — P. 896—
993.

63. Ducasse A., Segal A., El Ladki S., Flament J. B.
Vascularisation arterielle et innervation de la glande
lacrymale. A propos de 100 dissections // Ophtalmo-
logie. — 1990. — Vol. 4. — P. 129—133.

64. Duke-Elder S. Diseases of the Outer Eye. —
St Louis, CV Mosby, 1965. — Vol 8. — P. 1061 — 1070.

65. Duke-Elder S., Wybar К. С System of Ophthal­
mology. The Anatomy of the Visual System. — St. Louis,
CV Mosby, 1961. —Vol II.

66. Eakins К. Е., Katz R. The pharmacology of extra­
ocular muscle. In Bach-y-Rita P. Collins С. С. (eds):
The Control of Eye Movements. — New York: Academic
Press, 1971. —P. 237—258.

67. Earley O. Morphology and in vitro growth dyna­
mics of the human epithelium. An age-related study //
MD Thesis.— 1991.

68. Egeberg J., Jensen O. A. The ultrastructure of the
acini of the human lacrimal gland // Acta Ophthal­
mol. — 1969. — Vol. 47. — P. 400—410.

69. Engel W. K. The essentiality of histo and cyto-
chemical studies in the investigation of neuromuscular
disease // Neurology (Minneap). — 1962. —Vol. 12. —
P. 778—787.

158

Глава 2. ГЛАЗНИЦА И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЙ АППАРАТ ГЛАЗА

 

70. Engel W. К., Brooke M. Н. Muscle biopsy as а
clinical diagnostic aid. — In: Fields W. S. (ed): Neuro­
logical Diagnostic Techniques, Springfield, IL, Charles С
Thomas, 1966. — P. 90—146.

71. Engelman T. W. Hornhaut der Auqes. — Leipziq,
1867.

72. Foldi M. Lymphogenetic haematopathy // Angio-
logica. — 1968. — Vol. 5. — P. 250—262.

73. Ford L.C., DeLange R.J., Petty R.W. Identi­
fication of a nonlysozymal bacteriocidal factor (beta
lysin) in human tears and aqueous humor // Am J
Ophthalmol. — 1976. — Vol. 81. — P. 30—33.

74. Franklin R. M. Immunohistological studies of
human lacrimal gland: localisation of immunoglobulins,
secretory component and lactoferrin ■// J Immunol. —
1973.— Vol. 110. — P. 984—996.

75. Frieberg T. Weitere Untersuchungen uber die
Mechanik der Tranehableitung // Auqenheilkunde. —
1918.— Vol. 39.— P. 266-275.

76. Frohse F. Uber die Verzweigung der Nerven
zu und in den menschlichen Muskeln // Anat Anz. —
1898.— Vol. 14.— P. 321—330.

77. Fuchs A. F., Kornhuber H. H. Extraocular muscle
afferents to the cerebellum of the cat // J. Physiol.
(Lond). — 1969. — Vol. 200. — P. 713—722.

78. Gasser R. F. The development of facial musc­
les in man //  Am. J. Anat. — 1967. — Vol. 120. —
P. 357.

79. Gauthier G. F. On the relationship of ultrastruc-
tural and cytochemical features to color in mammalian
skeletal muscle // Z. Zellforsch Mikrosk. Anat. —
1969.— Vol. 95.— P. 462—471.

80. Gavaris P. Editor's note: the lid crease // Adv
Ophthalmol Plast Reconstr Surg. — 1982. — Vol. 1.—
P. 89—101.

81. Gillette Т.Е., Allansmith M. R., Greiner J. V.
Histologic and immunohistologic comparison of main
and accessory lacrimal tissue // Am J Ophthalmol. —
1980.— Vol. 89.— P. 724—733.

82. Gould R. P. The microanatomy of muscle //
In: Bourne G. H. (ed): The Structure and Function of
Muscle. — New York, Academic Press, 1973.

83. Greiner J. V., Covington H. /., Allansmith M. R.
The human limbus. A   scanning electron microsco­
pic study // Arch Ophthalmol. — 1979. — Vol. 97.—
P. 1159—1171.

84. Greiner J. V., Gladstone L., Covington H. I.
Branching of microvilli in the human conjunctival epi­
thelium // Arch Ophthalmol. — 1980. —Vol. 98.—
P. 1253—1262.

85. Greiner J. V., Kenyon K.R., Henriguez A. S.
Mucus secretory vesicles in conjunctival epithelial cells
of wearers of contact lenses // Arch Ophthalmol. —
1980.— Vol. 98.— P. 1843—1846.

86. Grimes P., von Sallmann L. Comparative anato­
my of ciliary nerves // Arch Ophthalmol. — 1960. —
Vol. 64. —P. 81—89.

87. Gruntzig J. Abfluss der radioakliven lymphpflich-
tigen Substanzen Au-198-kolloid und Tc-99m-Schwefel-
kolloid aus der Orbita des Kaminchens, Albrecht V //
Graefes Arch Klin Exp Ophthal. — 1977. — Vol. 204. —
P. 161 — 170.

88. Gruntzig J. Anatomie und Pathologie des Kon-
junktivalen lymphgefassystems // Fortschr Ophthal­
mol. — 1986. — Vol. 83. — P. 25—30.

89. Gruntzig J. Studien zur Lymphdrainage des
Anges: 2. Abfluss lymphflichtiger radioaktiver Substan­
zen aus der Vorderkammer //Klin МЫ Augenheik. —
1977.— Vol. 171. —P. 571—579.

90. Gruntzig J. Studien zur Lymphdrainage des
Anges: 4. Abfluss lymphflichtiger radioaktiver Tracer

(99mTc-Mikrokolloid) nach intra-vitreolar injecktion // Klin МЫ Augenheik. — 1978. — Vol. 172. — P. 87—95.

91. Gruntzig /., Huth F. Studien zur lymphdrainage
des Auges: 3 Untersuchungen zum Tuscheabfluss aus
dem Glaskorper nach beidseitiger zervkaler lymph-
blockage // Klin МЫ Augenheilk.—1977. —Vol. 171.—
p. 774—783.

92. Guerin J. Memoire sur la myotomie oculaire
par la methode sons-conjonctivale // Gaz Med Paris 2
(serie 10).— Vol. 81. —P. 1842—1850.

93. Gundersen Т., Peartson H. R. Conjunctival flaps
for corneal disease: Their usefulness and complications
// Trans Am Ophthalmol Soc. — 1969. — Vol. 67.—
P. 78—95.

94. Gurwitsch M. Ueber die Anastomosen zwischen
den besichts und Orbital venen // Albrecht von Graefes
Arch. Klin. Exp. Ophthalmol. — 1883.— Vol. 29.—
P. 31—83.

95. Hanson J., Lennerstrand G. Contractile and his-
tochemical properties of the inferior oblique muscle in
the rat and in the cat // Acta Ophthalmol (Copenh). —
1977.— Vol. 55.— P. 88—96.

96. Harker D. U. The structure and innervation of
sheep superior rectus and levator palpebrae extraocu­
lar muscles // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1972.—
Vol. 11—P. 956—969.

97. Hawes M. J., Dortzbach R. K. The microscopic
anatomy of the lower lid retractors // Arch Ophthal­
mol. — 1982. — Vol. 100.— P. 1313—1321.

98. Hayreh S. S. Blood supply and vascular dis­
orders of the optic nerve // Ann Inst Barrsquer. —
1963.—Vol. 4.— P. 7—15.

99. Hayreh S. S. Blood supply and vascular disorders
of the optic nerve // In The Optic Nerve (ed. J. S. Cant). —
Henry Kimpton, London, 1972.— P. 59—68.

 

100. Helveston E.M., Merriam W.W., Ellis F.D.
The trochlea: a study of anatomy and physiology //
Ophthalmology. — 1982.— Vol. 89. — P. 124—131.

101. Henderson J. W. Applied anatomy of the orbit //
In: Orbital tumors. — W. B. Saunders company, 1973. —
P. 11—25.

102. Henderson J. W. Orbital tumors. Ill Edition.—
Raven Press, New Jork, 1994.— P. 448.

103. Henry J. G. M. Contribution a l'etude de l'anato-
mie des vaisseaux de l'orbite et de la loge caverneuse —
par injection de matieres plastiques — du tendon de
Zinn et de la capsule de Tenson. — PhD Thesis, Paris.
1959.

104. Hess A. Further morphological observations of
«en plaque» and «en grappe» nerve endings on mam­
malian extrafusal muscle fibers with the cholinesterase
technique // Rev. Can. Biol. — 1962. — Vol. 21.—
P. 241—250.

105. Hines M. Studies on innervation of skeletal
muscle: III. Innervation of extrinsic eye muscles of rabbit
// Am J Anat. — 1931. — Vol. 47. — P. 1 — 12.

106. Hirano N. Histologische Untersuchungen uber
die nervose Innervation der menschlichen ausseren
Augen-muskeln Albrecht von Graefes // Arch Klin Exp
Ophthalmol. — 1941.—Vol. 142.— P. 560—574.

107. Hirano N. Nervose Innervation des Corpus ci-
liare des Menschen A von Graefes // Arch Ophthal­
mol. — 1941. — Vol. 142. —P. 549—567.

108. Holly R.J. Formation and stability of the tear
film // Int Ophthalmol. — 1973. — Vol. 13. — P. 73—76.

109. Hoogenraad T. U., Jennekens F. G. /., Tan К. Е.
W. P. Histochemical fibre types in human extraocular
muscles, an investigation of inferior oblique muscle //
Acta Neuropathol. — 1979. — Vol. 45. — P. 73—82.

110. Hovelacque A. L'anatomie des Nerfs Craniens
et achidietls. — Paris, 1927.

Литература

159

 

111. Ito Т., Shibasaki S. Lichtmikroskopische Unter-
suchungen uber die Glandula lacrimalis des Menschen
// Arch Histol Jap. — 1964. — Vol. 25. — P. 117—143.

112. Iwamoto Т., Smelser G. K. Electron microscope
studies on the mast cells and blood and lymphatic ca­
pillaries of the human comeal limbus // Invest Ophthal-
mol Vis Sci. — 1965. — Vol. 4. — P. 815—829.

113. Iwata Т., Ohkawa K., Uyama M. The fine
structural localization of peroxidase activity in goblet
cells of the conjunctival epithelium of rats // Invest
Ophthalmol Vis Sci. — 1976. — Vol. 15.— P. 40—43.

WA.Jacoby J. Single channel currents recorded from singly- and multiply-innervated fibers of extraocular muscle // Invest Ophthalmol. Vis Sci. — 1991. — Vol. 32.— P. 1242—1251.

\\Ъ. Jakobiec F. A., Iwamoto T. The ocular adnexa: Lids, conjunctiva, and orbit // In: Fine B. S., Yanoff M. Ocular Histology. A Text and Atlas. 2nd ed., 1979. — P. 289-342.

116. Jester J.V., Nicolaides N.. Smith R. E. Mei-bomian gland studies: histologic andd ultrastructural investigations // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1981. — Vol. 20. — P. 537—545.

117./o A., Trauzettel H. Topographische Beziehun-gen der vehen in des Orbita //Verb Anat Ges. — 1974.—Vol. 68.— P. 539—547.

118. Johnson С The brow lift 1978 // Arch Oto-
laringol.—1978.— Vol. 96. — P. 1030—1041.

119. Jones L. T. A new concept of the orbital fascia
and rectus muscle sheaths and its surgical implications
// Trans Am Acad, Ophthalmol, Otolaryngol. — 1968. —
Vol. 72. — P. 755—764.

120,/orce.s L. T. An anatomical approach to problems of the eyelids and lacrimal apparatus // Arch Ophthal­mol. — 1961. — Part. III.— P. 66—73.

121. Jones L.T. Anatomy of the tear system //
Intern Ophthalmol Clin. — 1973. — Vol. 13. — № 1.—
P. 3—22.

122. Jones L.T., Marouis M.H., Vincent N. J. Lac-
rymal function //   Am. J. Ophthalmol. — 1972.—
Vol. 73. — P. 658—659.

123. Jones L.T. The lacrimal tear system and its
treatment // Am J Ophthalmol. — 1966. — Vol. 62. —
P. 47-55.

\2A. Jones L. Т., Wobig J. L. Newer concepts of tear duct and eyelid anatomy and treatment // Trans Am Acad, Ophthalmol, Otolaryngol. — 1977. — Vol. 83.— P. 603-616.

125. Jones L.T., Wobig J.L. Surgery of the eye­
lids and lacrymal system. — Aesculapus, Birmingham,
1976.— P. 149—157.

126. Jonson C.C. Epicanthus and epiblepharon //
Arch Ophthalmol. — 1978. — Vol. 96. — P. 1030—1042.

127. Kato T. Uber histologische Untersuchungen der
Augen-muskeln von Menschen und Saugetieren // Okaji-
mas Folia Anat Jpn. — 1938. — Vol. 16. — P. 131 — 140.

128. Kenyon K. R., Fogle J. A., Stone D. L. Regenera­
tion of corneal epithelial basement membrane following
thermal cauterization // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1977. _Vol. 16.— P. 292—301.

129. Ken K. W., Hollowell O. W. Location of pupillo-
motor and accommodation fibers in the oculomotor ner­
ve: Experimental observation on paralytic mydriasis //
J Neurol Neurosurg Psychiatry.— 1964. — Vol. 27.—
p. 473-481.

130. Kessing S. V. Epithelial cysts in the conjunctiva
// Ada Ophthalmol. — 1969. — Vol. 47. — P. 642—655.

131. Kessing S. V. Investigations of the conjunctiva!
mucin. Quantitative studies of the goblet cells of con­
junctiva // Ada Ophthalmol. — 1966.— Vol. 44.—
P. 439—447.

 

132. Kessing S. V. Mucous gland system of the con­
junctiva. A quantitative normal anatomical study // Acta
Ophthalmol Suppl. — 1968. — Vol. 95. — P. 1 — 12.

133. Kobayashi M. Electron microscopic studies on
the lacrimal gland. Report 2. The lacrimal gland of human
eye // Acta Soc Ophthalmol Jap. — 1958. — Vol. 62. —
P. 2208—2215.

134. Koornneef L. Details of the orbital connective
tissue system in the adult // Acta Morphol Neerl
Scand.—1977.— Vol. 15.— P. 1—34.

135. Koornneef L. New insights in the human orbi­
tal connective tissue // Arch Ophthalmol.— 1976.—
Vol. 95.— P. 1269—1278.

136. Koornneef L. Spatial aspects of orbital musculo-
fibrous tissue in man: A new anatomical and histological
approach. — Amsterdam, Swets en Zeitlinger, 1977.

137. Koornneef L. The architecture of the musuclo-
fibrous apparatus in the human orbit // Acta Morphol
Neerl Scand. — 1977. — Vol. 15.— P. 35—44.

138. Koornneef L. The development of the connec­
tive tissue in the human orbit // Acta Morphol Neerl
Scand. — 1976.— Vol. 14.— P. 263—271.

139. Koornneef L. The first results of a new anato­
mical method of approach of the human orbit following
a clinical enquiry // Acta Morphol Neurol Scand. —
1974.—Vol. 12.— P. 259—265.

140. Koshland M. E. Structure and function of the
J chain//Adv Immunol. — 1975. — Vol. 20. —P. 41—50.

141. Kuhnel W. Vergleichende histologische, histo-
chemische und electronenmikroskopische Untersuchun­
gen an Trandendrusen. VI. Menschliche Tranendruse //
Zeitschr Zellforsch. — 1968. —Vol. 89. — P. 550—572.

142. Lasjaunias P., Brismar J., Morret J. Recurrent
cavernous branches of the ophthalmic artery // Acta
Radiol Suppl. — 1978.— Vol. 19. — P. 553—561.

143. Lemke B. N., Strasior O. G. The anatomy of eye­
brow ptosis // Arch Ophthalmol. — 1982. — Vol. 100 —
P. 981—993.

144. Lemp M. A., Weiler H. H. How do tears exit? //
Invest Ophthatmol. Vis Sci. — 1983. — Vol. 24.—
P. 619—624.

145. Lennerstrand G. Electrical activity and isomet­
ric tension in motor units of the cat's inferior oblique
muscle // Acta Physiol Scand. — 1974. — Vol. 91.—
P. 458.

146. Lennerstrand G. Histochemical studies on the
inferior oblique muscle of Siamese cats and domestic
cats with unilateral  lid suture // Exp Eye Res. —
1980.— Vol. 30.— P. 619—627.

147. Liu D., Stasior O. G. Lower eyelid laxity and
ocular symptoms // Am. J. Ophthalmol.— 1983.—
Vol. 95. — P. 545—554.

148. Lockhart R. D., Brandt W. Length of striated
muscle fibers // J. Anat. — 1938. — Vol 72 — P. 470—
485.

149. Lockwood С. В. The anatomy of the muscules,
ligaments and fascia of the orbit, including an account
of the capsule of tenjn, the check ligaments of the recti,
and of the suspensory ligament of the eye // J. Anat.
Physiol. — 1886. — Vol. 20. — P. 1.

150. Lyness R. W. An investigation into some as­
pects of the histopathology of extraocular muscles. —
MD Thesis, University of Belfast, 1986.

\Ы. Maes-Castellarin S., Adenis J. P., Robert P. Y. Relationship between Whitnall's ligament and the posi­tion of the superior eyelid // Orbit. — 1995. — Vol. 14. — P. 43—51.

152. Manni £., Bortolami R., Derin P.L. Presence of cell bodies of the afferents from the eye muscles in the semilunar ganglion // Arch. Ital. Biol. — 1970. — Vol. 108. — P. 106—112.

160

Глава 2. ГЛАЗНИЦА И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЙ АППАРАТ ГЛАЗА

 

153. Manni Е., Bortolami R., Deriu P. L. Superior
oblique muscle proprioception and the trochlear nerve //
Exp. Neurol. — 1970. — Vol. 26. — P. 543—553.

154. Manni E., Palmieri G., Marini R. Central path­
way of the extraocular muscle proprioception // Exp
Neurol. — 1974.— Vol. 42. — P. 181 — 190.

155. Marchi V. Ueber die Terminolorgan der Nerven
(Golgi's Nervenkorperchen) in den Schnen der Augen-
muskeln // Albrecht von Graefes Arch Kiln Exp Ophthal-
mol. — 1882. — Vol. 28. — P. 203—212.

156. Martinez A. I., Hay S., McNeer K. W. Extra-
ocular muscles, light microscopy and ultrastructural fea­
tures // Acta Neuropathol (Bed). — 1976. — Vol. 34. —
P. 237—246.

157. Mayr R. Structure   and distribution of fiber
types in the external eye muscles of the rat // Tissue
Cell. — 1971, —Vol. 3. — P. 433—441.

158. Mayr R., Stockinger L., Zenker W. Electronen-
mikroskopische Untersuchungen an unterschiedlich in-
nervierten Muskelfasern der ausseren Augenmuskulatur
des Rhesu-saffen // Z Zellforsch. — 1966. — Vol. 75. —
P. 434—442.

159. McGetrick J.J., Wilson D.G., Dortzbach R. K.
Lymphatic drainage of the monkey orbit. — Atlanta,
1984.

160. McLoon L.K., Wirtschafter I. D. Regional dif­
ferences in the orbicularis oculi muscle: conservation
between species // J Neurol Sci. — 1991. — Vol. 104. —
P. 197—206.

161. Merrillees N.C.R. Some observations on the
fine structure of a Golgi tendon organ of a rat. — In:
Barker D. (ed): Symposium on Muscle Receptors. —
Hong Kong University Press, 1962. — P. 199—205.

162. Merrillees N. C, Sunderland S., Hayhow W.
Neuromuscular spindles in the extraocular muscles in
man // Anat Rec. — 1950. — Vol. 108. — P. 23—30.

163. Meyer P.A.R. The circulation of the human
limbus // Eye. — 1989. — Vol. 3. — P. 121 — 130.

164. Meyer P. A. R., Watson P. G. Low dose fluores-
cein angiography of the conjunctiva and episdera // Br.
J. Ophthalmol. — 1987. — Vol. 71. —P. 2—11.

165. Miller I.E. Cellular organization of rhesus
extraocular muscle // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1967. —Vol. 6.— P. 18—27.

166. Montagna W. Advances in the Biology of the
Skin. — New York, 1967.

167. Morrison J. C, Van Buskirk E.M. Anterior col­
lateral circulation in the primate eye // Ophthalmo­
logy. — 1983. — Vol. 90. — P. 707—715.

168. Mukuno K. Fine structure of the human extra­
ocular muscles: II. Two distinct types of muscle fibers
// Acta Soc. Ophthalmol. Jpn. — 1967. — Vol. 71.—
p. 907—914.

169. Mukuno K. Fine structure of the human extra­
ocular muscles: III. Neuromuscular junctions in the nor­
mal human extraocular muscles //Acta Soc. Ophthal­
mol. Jpn. — 1968. —Vol. 72.— P. 104—111.

170. Mukuno K. The fine structure of the human
extraocular muscle: II. The classifications of muscle
fibers // Jpn. J. Ophthalmol. — 1968.—Vol. 12.-^
P. 111 — 120.

171. Muller E. The development of the anterior ful-
cate and lacrimal arteries in the human // Anat Emb-
ryol. — 1977. —Vol. 150.— P. 207—213.

172. Murube del Castillo J. On the gravity as one
of the impelling forces  of lacrimal flow. 1979 // In:
Yamaguchi M. Recent Advances on the lacrymal sys­
tem. — Asahi Evening New Japon, 1978.—Vol. 8.—
P. 51—59.

173. Nagpal K.R.. Asdurian G.K.S., Goldbaum M.H.
The conjunctival sickling sign, hemoglobin S and irre-

versibly sickled erythrocytes // Arch Ophthalmol. — 1977.—Vol. 95.— P. 808—811.

174. Namba Т., Nakamura Т., Grob D. Motor nerve
endings in human extraocular muscle // Neurology (Min-
neap).—1968.— Vol. 18.— P. 403—411.

175. Netter F.H. Atlas of human Anatomy // Eart
Yanover. — 1997. — P. 520—529.

176. Nichols В., Dawson C. R., Togni B. Surface
features of the conjunctiva and cornea // Invest Ophthal­
mol. Vis Sci. — 1983. — Vol. 24. — P. 570—579.

177. Norn M.S. Mucous on conjunctiva and cornea
// Acta Ophthalmol. — 1963. — Vol. 41. —P. 13—24.

178. Orzalesi N., Riva A., Testa F. Fine structure of
human lacrimal gland 1. The normal gland // J. Sub-
micro Cytol. — 1971. — Vol. 3. — P. 283—296.

179. Pachter B. R., Davidowitz I., Breinin G.M.
Light and electron microscopic serial analysis of mouse
extraocular muscle: Morphology, innervation and topo­
graphical organization of component fiber populations //
Tissue Cell. — 1976. —Vol. 8. — P. 547—556.

180. Pachter B. Rat extraocular muscle: III. Histo-
chemical variability along the length of multiply-inner­
vated fibers of the orbital surface layer // Histochemist-
ry. — 1984. — Vol. 80. — P. 535—544.

181. Pachter В., Colbjornsen C. Rat extraocular
muscle: II. Histochemica! fiber types //J. Anat. (Lond).—
1983.— Vol. 137.— P. 161 — 173.

182. Padykula H.A., Gauthier G.F. Morphological
and cytochemical characteristics of fiber types in normal
mammalian skeletal muscle // In: Milhorat A. T. (ed):
Exploratory Concepts in Muscular Dystrophy, 1967. —
P. 117—128.

183. Palade G.E., Siekevitz P., Cam L.G. Struc­
ture, chemistry and function of the pancreatic exocrine
cell // In: DeReuck A. V. S., Cameron M. P. (eds): The
Exocrine Pancreas. Normal and Abnormal Functions.
Ciba Foundation Symposium, Boston, Little, Brown,
1962.— P. 23—55.

184. Peter J. В., Barnard V. R., Edgerton V.R.,
Gillespie С A., Stempel К. Е. Metabolic profiles of the
three fibers of skeletal muscles in guinea pigs and rab­
bits // Biochemistry. — 1972.—Vol. 11. —P. 2627—
2639.

185. Pfister R. R. The healing of corneal epithell
abrasions in the rabbit: a scanning electron micro­
scope study // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1975. —
Vol. 14.— P. 648—657.

186. Pfister R. R. The normal surface of conjunc­
tiva epithelium. A scanning electron microscopic study
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1975. — Vol. 14.—
P. 267—279.

187. Pierobon-Bormioli S., Torresan P., Sartore S.
Immunohistochemical identification of slow-tonic fibers
in human extrinsic eye muscles // Invest Ophthalmol
Vis Sci. — 1979.— Vol. 18.— P. 303—311.

188. Pizzarello L. D., Jakobiec F. A. Bowen's disease
of the conjunctiva // In Jakobiec F. A. (ed): Ocular and
Adenexal Tumors. — Birmingham, Aesculapius, 1978. —
P. 553—571.

189. Porter J. D. Brainstem terminations of extra­
ocular muscle primary afferent neurons in the monkey
//J. Сотр. Neurol.— 1986, —Vol. 247.—P. 133—141.

190. Porter J. D., Baker R. S., Spencer R. F. Ontoge-
netic and phylogenetic changes in the extraocular muscle
orbital single innervated fiber type // Invest Ophthalmol
Vis Sci.—1991.— Vol. 32(Suppl). — P. 1242—1251.

191. Porter J. D., Guthrie B. L., Sparks D. L. Inner­
vation of monkey extraocular muscles: Localization of
sensory and motor neurons by retrograde transport of
horseradish peroxidase // J Comp Neurol. — 1983. -—
Vol. 218.— P. 208—217.

Литература

161

 

192. Porter 1. D., Spencer R. F. Localization and mor­
phology of cat extraocular muscle afferent neurones
identified by retrograde transport of horseradish peroxi-
dase // J Cornp Neurol. — 1982. — Vol. 204. — P. 5668.

193. Porter et al., 1993

194. Putterman A.M., Urist M. J. Surgical anatomy
of the orbital septum // Ann Ophthalmol. — 1974. —
Vol. 6. — P. 290—302.

195. Reeh M. /., Wobig J. L, Wirtschafter J. D. Oph­
thalmic Anatomy. — San Francisco, American Academy
of Ophtjalmology, 1981.

196. Reichmann H., Srihari T. Enzyme activities,
histochemistry and myosin light chain pattern in extra-
ocular muscles of rabbit // Histochemistry. — 1983. —
Vol. 78.— P. 111 — 120.

197. Richmond F. J. R., Johnston W. S. W., Baker R. S.
Palisade endings in human extraocular muscles // Invest
Ophthalmol. Vis Sci. — 1984. — Vol. 25. — P. 471—482.

198. Ringel S. P., Engel W. K-, Bender A. N. Histo­
chemistry and acetylcholine receptor distribution in nor­
mal and denervated monkey extraocular muscles //
Neurology (Minn). — 1978. — Vol. 28. — P. 55—63.

199. Ringel S. P., Wilson W. В., Barden M. T. Histo­
chemistry of human extraocular muscle // Arch Oph-
tholmol. — 1978. — Vol. 96. — P. 1067—1074.

200. Riva A., Riva-Festa F. Fine structure of acinar
cells of human parotid gland // Anat Rec.— 1973.—
Vol. 176.— P. 149—166.

201. Roen J.L., Stasior O. G., Jakobiec F.A. Aging
changes in the human lacrimal gland: The role of the
ducts // CLAO J. —1985.—Vol. 11. —P. 237—246.

202. Romanul F. С A. Enzymes in muscle: L Histo-
chemical studies of enzymes in individual muscle fibers
// Arch Neurol. — 1964. — Vol. 11. — P. 355—364.

203. Rook A. The skin and the eyes // In Rook A.,
Wilkinson D. S. (eds): // Textbook of Dermatology, Phila­
delphia, F.A. Davis. — 1968.— P. 1512—1513.

204. Rootman J. Diseases of the orbit. — Philadel­
phia, J. B. Lippincott, 1988.

205. Rosengren B. Zur Frage der mechanik der
mechanik der tranenbleiking // Acta Ophthalmol. —
1928.— Vol. 6.— P. 367—375.

206. Rowlerson A. M. Fibre types in extraocular
muscles // ESA Symposium Text. — 1987. — Vol. 1. —
P. 19-27.

207. Ruskel G. L. Sheathing of muscle fibres at neu-
romuscular junctions and at extrajunctional loci in hu­
man extraocular muscles // J Anat (Lond).— 1984.—
Vol. 138.— P. 33—41.

208. Ruskel G. L. Spiral nerve endings in human
extraocular muscles terminate in motor end plates //
J Anat (Lond). — 1984. — Vol. 139. — P. 33—42.

209. Ruskel G. L. The fine structure of innervated
myotendinous cylinders in extraocular muscles of rhe­
sus monkeys // J Neurocytol.— 1978.—Vol.   7.—
P. 693—705.

210. Ruskel G. L. The incidence and variety of Gol-
gi tendon organs in extraocular muscles of the rhe­
sus monkeys // J Neurocytol.— 1979.—Vol. 8.—
P. 639—647.

211. Ruskel G. /.., Wilson J. Spiral nerve endings and
dapple motor end plates in monkey extraocular muscles
// J Anat (Lond). — 1983. — Vol. 136. — P. 85—94.

212. Ruskell G. L. Extraocular muscle proprioceptors
and proprioception // Prog Retin Eye Res. — 1999. —
Vol. 18.— P. 269—291.

213. Ruskell G. L. Nerve terminals and epithelial
cell variety in the human lacrimal gland // Cell Tissue
Res. — 1975.—Vol. 158.— P. 121 — 136.

214. Salamon G., Raybund C., Griscoli F. Anatomi­
cal study of the blood vessels of the orbit, in Proceedings

of the Second Congress of the European Association of Radiology // Amsterdam. — 1971. — P. 284—292.

215. Sartore S., Mascarello P., Rowlerson A. Fibre
types in extraocular musdes: a new myosin isoform in
the fast fibres // J Muscle Res Cell Motil. — 1987. —
Vol. 8.— P. 161 — 170.

216. Scheie H. G., Albert D. M. Districhiasis and tri-
chiasis // Am. J. Ophthalmol. — 1966. — Vol. 61 —
P. 718—725.

217'. Schiefferdecker P. Eine Eigentomlichkeit im Baue der Augenmuskeln // Dtsch Med Wochnschr. — 1904. — Vol. 30. — P. 725—734.

218. Schirmer O. Mikroskopische Anatomie und
Physiologle der Thranenorgane // In: Graefe-Saemisch
Hb des Augenheilk, 2nd ed., Leipzig, 1904. — P. 1—89.

219. Schnyder H. The innervation of the monkey
accessory lateral rectus musde // Brain Res. — 1984. —
Vol. 296.— P. 139—150.

220. Schwarz W. In Anatomic der Komea // Berg-
mann, Munich. — 1971. — P. 1.

221. Sears M. L, Teasdal Stone H. H. Strech effects
in human ocular muscle: An electromyographic study //
Bull Johns Hosp. — 1959. —Vol. 104.— P. 174—183.

222. Seifert P., Spitznas M. Demonstration of nerve
fibers in human accesory lacrimal glands // Graefe's
Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. — 1994. — Vol. 232.—
P. 107—114.

223. Seifert P., Spitznas M., Koch F., Cusumano A.
The architecture of human accesory lacrimal glands //
Germ. J. Ophthalmol.— 1993. —Vol. 2. — P. 444—454.

224. Seraux H., Lamasson C, Offret #., Renard G.A.
Anatomie et histologie de l'cell (2 ed). — Paris, 1982. —
P. 324—334.

225. Sevel D. Reappraisal of the origin of human
extraocular muscles // Ophthalmology.— 1981.—
Vol. 88.— P. 1330—1342.

226. Shore J. W., McCord С D. Anatomic changes in
involutional blepharoptosis // Am. J. Ophthalmol. —
1984.— Vol. 98.— P. 21—30.

227. Simonton J. Т., Garber P. F., Ahl N. In margins
of safety in lateral orbitotomy // Arch Ophthalmol. —
1977.—Vol. 95.— P. 1229—1241.

228. Simreich Z., Nathan H. The ciliary ganglion in
man (anatomical observations) // Anat Anz. — 1981. —
Vol. 150, 3. — P. 287—298.

229. Spencer R. F., Porter J. D. Innervstion and struc­
ture of extraocular muscles in the monkey in compari­
son to those of the cat // J Comp Neurol. — 1981. —
Vol. 198. — P. 649—660.

230. Spencer R. F., Porter J.D. Structural organi­
zation of the extraocular muscules, in Neuroanatomy
of the oculomotor system (ed. J. A. Buttner-Ennever)
// Elsevier, Amsterdam. — 1988. — P. 33—79.

231. Spira M., Hardy S. The brow lift // In Conley J.,
Dickenson J. T. eds.: Plastic and Reconstructive Surgery
of thr face and neck: // First International Symposium,
New Jork, Grune and Stratton Inc. — 1970. — Vol. 1. —
P. 17—20.

232. Spiro A. J., Beilin R. L. Human muscle spindle
histochemistry // Arch Neurol. — 1969. — Vol. 20.—
P. 271—280.

233. Srinivasan B.D., Jakobiec F.A., Iwamoto T.
Epibulbar mucogenic subconjunctival cysts // Arch
Ophthalmol. — 1978. — Vol. 96. — P. 857—859.

234. Srinivasan B. D., Jakobiec F., Iwamoto T. Giant
papillary conjunctivitis with ocular prostheses // Arch
Ophthalmol. — 1979. — Vol. 97. — P. 892—895.

235. Srinivasan B. D., Worgul B. V., Iwamoto T.
The conjunctival epithelium III. Histochemical and ultra-
structural studies on human and rat conjunctiva //
Ophthal Res. — 1977.— Vol. 9. — P. 65—79.

162

Глава 2. ГЛАЗНИЦА И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЙ АППАРАТ ГЛАЗА

 

236. Srinivasan В. D., Worgul В. V., Iwamoto Т.
The reepithelialization