Борьба с микрофлорой на путях воздушного инфицирования

Хирургический стационар включает несколько основных функциональных под­разделений: операционный блок, палаты хирургического отделения, перевязочные, процедурные и др.

Успех профилактики экзогенного инфицирования у хирургических больных воз­можен при условии комплексного подхода на всех этапах пребывания больного в ста­ционаре: приемное отделение — хирургическое лечение — диагностические кабине­ты — перевязочная — операционная. -.

Вся работа хирургического стационара по профилактике экзогенной инфекции начинается с разделения больных на «чистых» и «гнойных». Больных с гнойно-вос­палительными хирургическими заболеваниями госпитализируют в гнойные (инфек­ционные) хирургические отделения, которые полностью изолированы от чистых от­делений. В них работает свой персонал, имеются свои перевязочные, операционные, процедурные помещения (для выполнения вливании, инфузии, взятия крови для лабораторных исследований и т.д.). Это отделение должно находиться в отдельном помещении. При наличии лишь одного хирургического отделения в нем выделяют специальные палаты для инфицированных больных, палаты располагаются в одной его части (отсек) с отдельной перевязочной в том же отсеке.

В приемном отделении, где проводятся первичный осмотр и обследование посту­пивших, сразу же разделяют потоки больных на «чистых» и «гнойных». В приемном отделении выполняют санитарно-гигиеническую обработку, которая предусматри­вает мытье больных (гигиеническая ванна или душ) и их переодевание. При опреде­ленных условиях (педикулез, чесотка) проводят специальную обработку а также де­зинфекцию и дезинсекцию белья.

В хирургическом отделении для поддержания санитарного режима проводится ежед­невная влажная уборка с применением антисептических средств и 1 раз в 3 дня —подвергается мебель отделения. Регулярное проветривание, использование конди­ционеров позволяют снизить степень бактериальной обсемененности помещений отделения. Важное значение имеет санитарный режим для персонала: душ перед началом работы, сменные одежда и обувь, ношение колпаков. Важным средством профилактики является обследование персонала на бациллоносительство (мазки из носа, глотки) и изоляция сотрудников с простудными и гнойничковыми заболе­ваниями.

Основной путь инфицирования ран в операционной — контактный (около 90% слу­чаев), лишь в 10% случаев инфицирование происходит воздушным путем. Каждый член хирургической бригады, несмотря на специальную подготовку к операции, стериль­ное операционное белье, соблюдение режима работы, выделяет в окружающий воз­дух до 1500 микроорганизмов в минуту. За 1 — 1,5 ч работы одной хирургической бри­гады бактериальная загрязненность воздуха в операционной увеличивается на 100%. Допустимое количество микроорганизмов в 1 м³ воздуха операционной перед нача­лом работы не должно превышать 500, во время операции - 1000 при условии отсут­ствия в воздухе патогенных микроорганизмов. Поддерживать такой уровень удается с помощью специальных устройств системы вентиляции, режима работы и уборки операционной, дезинфекции воздуха и предметов.

Хирургический стационар включает несколько основных функциональных под­разделений: операционный блок, хирургические отделения, перевязочные, проце­дурные.

Операционный блок — это набор специальных помещений для выполнения опера­ций и проведения обеспечивающих их мероприятий. Операционный блок должен располагаться в отдельном помещении или крыле здания, соединенном коридором с хирургическими отделениями, или на отдельном этаже многоэтажного хирургичес­кого корпуса. Чаше имеются разделенные между собой операционные для выполне­ния вмешательств у «чистых» и «гнойных» больных, хотя более целесообразно пре­дусмотреть отдельный, изолированный операционный блок при гнойных хирурги­ческих отделениях.

Операционный блок отделен от хирургических отделений специальным тамбуром — чаше это часть коридора, в которую выходят помещения операционного блока об­щего режима. Для обеспечения режима стерильности в операционном блоке выделя­ют специальные функциональные зоны (схема 3).

1. Зона стеригьного режима объединяет операционную, предоперационную и сте-рилизационную. В помещениях этой зоны производят: в операционной - непосред­ственно операции; в предоперационной — подготовку рук хирурга к операции; в сте-рилизационной — стерилизацию инструментов, которые понадобятся в ходе опера­ции или используются повторно.

2. В зону строгого режима входят такие помещения, как санпропускник, состоя­щий из комнат для раздевания персонала, душевых установок, кабин для надевания стерильной одежды, ^ги помещения располагаются последовательно, и персонал выходит из кабины для одевания прямо или через коридор в предоперационную. В эту же зону входят помещения для хранения хирургических инструментов и аппа­ратов, наркозной аппаратуры и медикаментов, кабинет переливания крови, поме­щения для дежурной бригады, старшей операционной сестры, санитарный узел для персонала операционного блока.+++++

Режим работы операционного блока предусматривает ограничение его посеще­ний; в зоне стерильного режима должны находиться только участвующие в операции хирурги и их ассистенты, операционные сестры, анестезиологи и анестезисты, сани­тарка для текущей уборки операционной. В зону стерильного режима допускаются студенты и стажирующиеся врачи. Работники операционного блока носят специаль­ную одежду: халаты или куртки и брюки, отличающиеся по цвету от одежды сотруд­ников других отделений.

Контроль за режимом стерильности операционного блока проводится периоди­чески путем бактериологического исследования воздуха операционной, смывов со стен, потолка, аппаратов и приборов. Материалы для посева берут 1 раз в месяц; еже­недельно, кроме того, выборочно делают посев с рук работников блока для контроля стерильности.

Стерильный режим в операционной достигается за счет предупреждения занесе­ния сюда из других помещений микроорганизмов и их распространения. Специаль­ное устройство операционного блока, использование стерильных шлюзов перед вхо­дом в операционную, подготовка больного к операции (мытье, смена белья, сбрива-ние волос в области операционного поля), подготовка к операции персонала (обязательное переодевание, использование стерильного белья, надевание бахил, шапочек, масок, обработка рук) значительно ограничивают проникновение микро­организмов в операционную.

Микроорганизмы в воздухе, на предметах очень редко находятся в изолирован­ном виде — в основном они фиксированы на микроскопических частицах пыли. По­этому тщательное удаление пыли, как и предупреждение проникновения ее в опера­ционную, уменьшают степень микробного загрязнения.

В операционной предусмотрены следующие виды уборки: предварительная, теку­щая, послеоперационная, заключительная и генеральная.

Перед началом операции влажной тряпкой протирают все предметы, приборы, подоконники, удаляют осевшую за ночь пыль (предварительная уборка). В ходе опе­рации постоянно убирают упавшие на пол салфетки, шарики, инструменты (теку­щая уборка). В промежутке между операциями, когда больной вывезен из операци­онной, убирают белье, салфетки, инструменты; влажной салфеткой, смоченной ра­створом антисептических средств, протирают операционный стол и накрывают его простыней; пол протирают влажной тряпкой (послеоперационная уборка). По окон­чании рабочего дня производят заключительную уборку, которая включает влажную уборку с протиранием потолка, стен, подоконников, всех предметов и аппаратуры, пола с использованием дезинфицирующих растворов (\-'3% раствор перекиси водо­рода с синтетическим моющим средством, раствор роккала и др.) и последующим включением бактерицидных ламп.

В конце недели осуществляют генеральную уборку операционной. Начинают ее с дезинфекции операционной: потолок, стены, все предметы, пол опрыскивают де­зинфицирующим раствором, а затем удаляют его путем протирания. После этого про­водят общую влажную уборку и включают бактерицидные ультрафиолетовые (УФ) лампы. Генеральная уборка может быть и внеочередной — при загрязнении операци­онной гноем, кишечным содержимым, после операции у больных с анаэробной ин­фекцией (газовой гангреной).

Для облучения воздуха и предметов, находящихся в операционной, используют напольные (передвижные), настенные, потолочные бактерицидные УФ-лампы раз-личной мощности (рис. 1). Бактерицидные лампы, снабженные специальными эк­ранами, защищающими от прямого действия УФ-лучей, могут работать при наличии людей в операционной.

Кроме бактерицидных ламп, тля обеззараживания воздуха в операционной могут быть использованы аэрозоли бактерицидных веществ, распыляемые специальным аппаратом типа «Дезинфаль». В качестве бактерищщных веществ используют смесь, содержащую 3% перекиси водорода и 0,5% молочной кислоты Распыление должно проводиться накануне, в крайнем случае - не менее чем за 2 ч до начала операции.

Предупреждение загрязнения воздуха в операционной достигается механической системой вентиляции, осуществляемой путем подачи воздуха с улицы или за счет его рециркуляции. С помощью приточной вентиляции воздух нагнетается через фильт­ры в операционную. Вместе с оседающей на фильтрах пылью удаляются фиксиро­ванные на ней микробы. Воздух выходит из операционной через естественные щели Такое направление потока позволяет избежать проникновения загрязненного возду­ха из соседних с операционной помещений, в том числе из хирургических отделе­ний. При отсутствии централизованной системы очистки воздуха от пыли и микро­бов могут быть использованы специальные передвижные воздухоочистители (ВОПР-1,5). За 15 мин работы аппарата количество микробов в операционной уменьшается в 7-10 раз.

Для выполнения некоторых вмешательств (таких, как пересадка органов, требую­щая в последующем применения иммунодепресс ивных средств, имплантация про­тезов, операции при обширных ожогах) используют операционные с ламинарным потоком стерильного кондиционированного воздуха (рис. 2). Количество микроор­ганизмов в таких операционных в десятки раз ниже, чем при обычной системе кон­диционирования воздуха. Ламинарный поток обеспечивает за час 500-кратный об­мен воздуха, который нагнетается под давлением 0,2—03 атм через специальный фильтр, представляющий собой потолок операционной, и выходит через отверстия в полу. Этим создается постоянный вертикальный поток: в операционную поступает стерильный воздух, а направленный его поток уносит микроорганизмы, попавшие в воздух от больного или от лиц, участвующих в операции. Ламинарный поток воздуха может быть как вертикальным, так и горизонтальным.

В старых операционных возможна установка специального бокса-изолятора с ла­минарным потоком воздуха: стены бокса из пластика или стекла не достигают пола, и нагнетаемый через фильтр-потолок стерильный воздух создает вертикальный ла­минарный поток, который вытесняет имеющийся в боксе воздух в щели, образовав­шиеся между его стенками и полом (рис. 3). Борьба с микрофлорой на этапах контактного инфицирования раны

Для предупреждения контактного инфицирования необходимо, чтобы было сте­рильным все, что соприкасается с раной, Это достигается специальной обработкой операционного белья, перевязочного и шовного материала, перчаток, инструментов, обработкой рук хирурга и операционного поля. Стерилизация (stehlis — бесплодный) — полное освобождение от микроорганизмов всех предметов, растворов, материа­лов. Дезинфекция предусматривает уничтожение патогенной микробной флоры. Сте­рилизация шовного материала направлена на профилактику как контактного, так и имплантационного инфицирования раны.

Стерилизация инструментов, перевязочного материала и белья включает следую­щие основные этапы: I - предстерилизационная подготовка материала; II — укладка и подготовка к стерилизации; III — стерилизация; IV — хранение стерильного мате­риала. Все эти этапы выполняются в соответствии с отраслевым стандартом «Стери­лизация и дезинфекция изделий медицинского назначения».

Стерилизация инструментов

Этап I — предстерилизационная подготовка. Ее цель - тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удале­ние пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.

Бывшие в употреблении, но неынфыцированные инструменты тщательно моют про­точной водой щетками в отдельной раковине в течение 5 мин (инструменты, загряз­ненные кровью, моют сразу, не допуская высыхания крови) и затем на 15-20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов, подогретом до 50°С. Шпри­цы обрабатывают в разобранном виде.

Состав моющих растворов: раствор А - пергидроля 20 г, стирального порошка (типа «Новость*, «Прогресс», «Астра* и др.) 5 г, воды 975 мл; раствор Б — 2,5% раствора перекиси водорода 200 мл, стирального порошка «Новость» 5 г, воды 795 мл.

После замачивания инструменты моют в том же растворе ершами, щетками (осо­бенно тщательно обрабатывают замки, зубчики, насечки), затем в течение 5 мин опо­ласкивают теплой водой и в течение 1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты и шприцы помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 85 "С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.

Инструменты и шприцы, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предвари­тельно помещают в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% ра­створом лизола на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, опо­ласкивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя даль­нейшую обработку по описанной выше методике.

Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией, замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси во­дорода и 0,5% раствора моющего средства (стиральный порошок), затем моют щет­кой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные инструменты. Через I сут (время для прорастания спор) их подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стери­лизация).

Пункционные, инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шпри­ца теплой водой, а затем 1 % раствором натрия гидрокарбоната, канал иглы прочища­ют мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой. После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а через 8—12 ч — повторно в дистиллированной в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом с помощью шприца либо резиновой груши. Иглы, загрязненные гноем, тщательно моют, просвет их промывают проточной водой; затем помешают на 1 ч в 5% раствор лизола, дополнительно промывая лизолом канал с помощью шприца или резиновой груши, и подвергают такой же дальнейшей обработке, как не загрязнен­ные гноем иглы.

Системы для трансфузии лекарственных веществ или крови требуют тщатель­ной обработки для предупреждения посттрансфузионных реакций и осложнений. В современных условиях используют разовые системы для трансфузии, стерилизо­ванные в заводских условиях. Систему многоразового использования сразу после переливания крови или лекарственного препарата разбирают — разъединяют стек­лянные части, капельницу и резиновые трубки, тщательно промывают проточной водой, разминая пальцами резиновую трубку (для лучшего удаления остатков кро­ви). Части системы опускают на 2 ч в подогретый до 60 °С специальный раствор, содержащий 1 % раствор натрия гидрокарбоната и 1% раствор нашатырного спирта. Затем части системы промывают проточной водой и кипятят в дистиллированной воде 30 мин, вновь промывают водой, разминая резиновые трубки, и повторно ки­пятят 20 мин в дистиллированной воде. После этого систему монтируют и упако­вывают для стерилизации.

Резиновые перчатки. В последнее время чаще используют перчатки разового пользования, стерилизованные в заводских условиях. При необходимости повтор­ного использования перчатки, загрязненные кровью, моют, не снимая с рук, проточ­ной водой до полного удаления крови, просушивают полотенцем и помещают на 30 мин в 0,5% раствор нашатырного спирта либо в моющий раствор (А или Б). Затем тщательно моют проточной водой, вывешивают на веревке для просушивания, после чего упаковывают для стерилизации.

Резиновые перчатки, загрязненные гноем или кишечным содержимым, подлежат уничтожению. При крайней необходимости их моют в проточной воде и помещают в моющий раствор на 45 мин, затем — в 5% раствор лизола на 30 мин, моют в растворе лизола, ополаскивают проточной водой и упаковывают для стерилизации. Эти пер­чатки могут использоваться для работы в гнойной перевязочной.

Для контроля полноты удаления крови с предметов, прошедших предстерилиза-ционную обработку, используют бензидиновую пробу: на предмет наносят по 3 кап­ли 1% раствора бензидина и перекиси водорода. Появление сине-зеленой окраски указывает на следы крови, оставшейся на предметах. В этом случае необходима по­вторная обработка.

Этап II — укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помешают в металлические коробки, укладывая их вер­тикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специаль­ной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводс­ких условиях.

Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных ти­пичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для опе­раций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заво­рачивают в простыню в виде пакета.

Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и завора­чивают в кусок хлопчатобумажной ткани в виде пакета, который помещают в стери-лизационную коробку (бикс). При массовой стерилизации шприцев в автоклавах (цен­трализованная стерилизация) используют специальную укладку, сшитую из хлопча­тобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, рядом — иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев. Укладки заво­рачивают в хлопчатобумажную пеленку в виде пакета и помещают в стерилизатор.

Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладыва­ют марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в от­дельный бикс.

Собранные системы для переливания крови проверяют на прочность резиновых трубок, плотность соединения их со стеклянными деталями и соответствие канюль павильонам иглы. Систему сворачивают в виде 2—3 колец, не допуская перегиба ре­зиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем - в вафельное полотенце и укладывают в биксы.

Этзп III — стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 °С), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стери­лизаторах (рис. 4). Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в ме-

таллических коробках (при снятых крышках) и включают подогрев. При открытой дверце доводят температуру до 80—85 °С и в течение 30 мин просушивают — удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 ^вС), поддерживая ее автоматичес­ки, и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и сниже­ния температуры до 70—50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15—20 мин (после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.

При работе с сухожаровым стерилизатором необходимо соблюдать меры безопас­ности: аппарат должен быть заземлен, по окончании стерилизации следует откры­вать дверцу шкафа только при снижении температуры до 70-50 °С. Запрещается пользоваться неисправным аппаратом.

Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве) (рис. 5). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если упаконки уложены в биксы, то их ре­шетки должны быть открыты. Биксы или другие упаковки укладывают свободно, что­бы пар распределялся равномерно.

Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм¹, что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизаций отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (темпе­ратура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматри­вать как основные. Метод стерилизации кипячением применяется в небольших ле­чебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют ста­ционарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стери­лизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.

В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбо­ната на 1 л воды (2% раствор). На дно кипятильника укладывают тонкий простеган­ный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нем, а не на инструментах.

Инструменты в разобранном виде укладывают на специальные сетки и опускают крючками на дно кипятильника, оставляя ручки крючков снаружи, и закрывают ки­пятильник крышкой. Время стерилизации — 40 мин с момента закипания воды. По окончании стерилизации сетку с инструментами подхватывают крючками, дают стечь воде и переносят на специальный столик, покрытый стерильной простыней, сложен­ной в 4 слоя. Операционная сестра раскладывает инструменты на большом операци­онном столе.

Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (ки­пячением в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для спинномозговой пункции и внутривенных вливаний ки­пятят в дважды дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия.

Инструменты, шприцы и иглы, загрязненные гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.

Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, под­лежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением. Их кипятят в течение 1 ч, извлекают из кипятильника и оставляют при комнатной тем­пературе на 12—24 ч (для прорастания спор), а затем повторно стерилизуют кипяче­нием в течение 1 ч (дробная стерилизация).

Основной метод стерилизации изделий из резины (дренажи, катетеры, перчатки) — автоклавирование. В исключительных случаях их подвергают кипячению в тече­ние 15 мин.

Стерилизацию инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапароскопы, аппараты или блоки аппаратов для искус­ственного кровообращения, гемосорбции), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе ГПД-250. Предметы для стерилизации помешают в герметичную сте-рилизационную камеру (рис. 6), которую наполняют окисью этилена. Время экспо­зиции - 16 ч при температуре 18°С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромида метилена при температуре 55 °С в течение 6 ч.

Стерилизация инструментов и оптических аппаратов (лапароскоп, торакоскоп) может быть проведена в спиртовом растворе хлоргексидина и первомуре. При такой стерилизации (химическими средствами) применяются металлические коробки с крышками, что предупреждает испарение препарата и загрязнение воздуха помеще­ний; при отсутствии специальной посуды используют эмалированную или стеклян­ную. Инструменты заливают раствором (чтобы он полностью покрывал их) и закры­вают крышкой.

В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов ни одним из указанных способов, используют метод обжигания В металлический тазик или лоток наливают 15—20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надежен, пожаро- и взрыво­опасен (наличие кислорода, паров наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожар­ной безопасности.

Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными мето­дами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. Пос­ле предстерилизаиионной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов. Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия оберты­вают марлей и кипятят в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната на­трия в течение 10 мин, затем помешают в 96% этиловый спирт на 30 мин.

Этап IV — хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специ­альном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Если материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут хранить­ся в этих биксах до 3 суг. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Стерилизация перевязочного материала, операционного белья }гап I — предстерилизационная подготовка материала К перевязочному материалу относятся марлевые шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Применяют их во время операции и перевязки с целью осушения раны, остановки кровотечения, для дренирования или тампонады раны Перевязочный материал готовят из марли и ваты, реже — из вискозы it лигнина Он должен обладать следующими свойствами:

1) быть биологически и химически интактным, не оказывать отрицательного вли­яния на процессы заживления;

2) обладать хорошей гитроскопичностью;

3) быть минимально сыпучим, так как отделившиеся нити могут остаться в ране как инородные тела;

4) быть мягким, эластичным, не травмировать ткани;

5) легко стерилизоваться и не терять при этом своих свойств;

6) быть дешевым в производстве (с учетом большого расхода материала). Норма расхода за год на 1 хирургическую койку — 200 м марли и 225 штук бинтов. Только на такую небольшую операцию, как агтпендэктомия, расходуется около 7 м марли.

Перевязочный материал готовят из марли, предварительно разрезанной на кусоч­ки. Марлю складывают, подвертывая края внутрь, чтобы не было свободного края (из него могут осыпаться волокна ткани). Материал заготавливают впрок, пополняя его запасы по мере расходования. Для удобства подсчета расходуемого во время операции материала его укладывают перед стерилизацией определенным образом: шарики — в марлевые мешочки по 50-1000 штук, салфетки - в связки по 10 штук. Перевязочный материал, кроме бинтов, не загрязненных кровью, после применения сжигают.

К операционному белью относятся халаты хирургические, простыни, полотенца, маоак, шапочки, бахилы. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумаж­ные исани — бязь, полотно. Операционное белье многоразового пользования должно иметь специальную метку и сдаваться в стирку отдельно от другого белья, в специ­альных мешках. У халатов не должно быть карманов, поясов; простыни должны быть подшиты. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для стерилизации складывают в виде рулонов, чтобы их легко можно было развернуть при использовании.

Этап II — укладка и подготовка материала к стерилизации. Перевязочный материал и операционное белье укладывают в биксы (рис. 7). При отсутствии биксов допуска­ется стерилизация в полотняных мешках

При универсальной укладке в бикс (мешок) помешают материал, предназначен­ный для одной небольшой типичной операции (аппендэктомия, грыжесечение, флеб-эктомия и др.). При целенаправленной укладке в бикс (мешок) закладывают необхо­димый набор перевязочного материала и операционного белья, предназначенного для конкретной операции (пневмонэктомия, резекция желудка и др.). При видовой укладке в бикс укладывают определенный вид перевязочного материала или белья (бикс с халатами, бикс с салфетками, бикс с шариками и т.д.).

Вначале проверяют исправность бикса, затем на его дно помещают развернутую простыню, концы которой находятся снаружи. Перевязоч­ный материал укладывают вертикально по сек­торам пачками или пакетами. Материал уклады­вают неплотно, чтобы обеспечить доступ пара, внутрь помешают индикаторы режима стерили­зации (максимальные термометры, плавящиеся вещества или пробирки с тест-микробом), края простыни заворачивают, бикс закрывают крыш-Рис 7. Бикс Шиммельбуи. з. кой и защелкивают замок. К крышке бикса при-шего ее.

При стерилизации в мешке перевязочный материал или белье укладывают неплот­но, мешок завязывают тесемками, опускают его в другой такой же мешок и завязыва­ют. При необходимости использования материала мешок помешают на табурет, са­нитарка развязывает верхний мешок, разводит его края и сдвигает книзу. Операци­онная сестра развязывает внутренний мешок стерильными руками, раскрывает его и извлекает материал.

Этап 111 — стерилизация. Эксплуатация автоклава допускается только при нали­чии разрешения Инспекции котлонадзора с отметкой в паспорте аппарата; к работе с автоклавом допускаются лица, сдавшие технический минимум по эксплуатации ав­токлава и имеющие соответствующее разрешение. Работа с автоклавом требует точ­ного соблюдения инструкции по эксплуатации аппарата. Необходимо соблюдать об­щие правила техники безопасности:

— обязательно заземлять паровой стерилизатор с электрическим подогревом;

— не приступать к работе на неисправном аппарате;

— во время работы не оставлять аппарат без присмотра;

— не доливать воду в воронку во время работы стерилизатора;

— по окончании стерилизации отключать нагреватель от сети и прикрывать вен­тиль впуска пара в стерилизанионную камеру из парообразователя;

— открывать крышку стерилизационной камеры только после того, как стрелка манометра опустится до нуля.

Отсчет времени стерилизации начинается с момента достижения заданного дав­ления. Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в течение 20 мин пришвлетт 2 am (температура J 32,9 °С).

Этап IV — хранение стерильного материала. По окончании стерилизации и сушки белья стерилизаяионную камеру разгружают, биксы вынимают, сразу закрывают ре­шетку и переносят их на специальный стол для стерильного материала. Хранят бик­сы в шкафах под замком в специальной комнате. Допустимый срок хранения перевя­зочного материала и белья, если бикс не вскрывался, - 48 ч с момента окончания стерилизации. Материал и белье, стерилизованные в мешках, хранят не более 24 ч.

Контроль стерильности

Контроль стерильности материала и режима стерилизации в автоклавах прово­дится прямым и непрямым (косвенным) способами. Прямой способ — бактериологи­ческий; посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологи­ческих тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлори­да натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.

Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определенной тем­пературе. Пробирки вкладывают вглубь бикса, а по окончании стерилизации извле­кают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о сте­рильности материала. Этот тест проводят раз в 10 дней.

Непрямые способы контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с определенной точкой плав-ления: бензойную кислоту (120 °С), резорбции (119 °С), антипирин (110 °С). Эти ве­щества выпускаются в ампулах. Их применяют также в пробирках (по 0,5 г), закры­тых марлевой пробкой. В бикс между слоями стерилизуемого материала закладыва­ют 1-2 ампулы. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу указы­вают на то, что температура в биксе была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее. Для контроля режима стерилизации в сухожаровых сте­рилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плав­ления: аскорбиновую кислоту (187-192 °С), янтарную кислоту (180-184 °С\ пило­карпина гидрохлорид (200 °С), тиомочевину (180 °С).

Более объективным из непрямых методов контроля режима стерилизации явля­ется термометрия. В каждый бикс между стерилизуемым материалом укладывают 1— 2 термометра. Их показатели отражают максимальную температуру, но не указывают время экспозиции (в течение какого периода эта температура поддерживалась в бик­се), в связи с чем и этот метод не исключает прямого контроля стерильности с ис­пользованием бактериологических тестов.

Стерилизация аппаратов для ингаляционного наркоза Аппараты для искусственной вентиляции легких и ингаляционного наркоза мо­гут быть причиной перекрестного инфицирования больных и распространения внуг-рибольничной инфекции. Инфицирование дыхательных путей больных чревато раз­витием в послеоперационном периоде воспалительных осложнений, протекающих в виде пневмонии, бронхита, трахеита, фарингита. В связи с этим обеззараживание анестезиологической и дыхательной аппаратуры - одно из важных мероприятий асеп­тики, направленное на предупреждение контактного и ингаляционного инфициро­вания дыхательных путей больного.»

Для предупреждения подобных осложнений необходимо выполнять следующие основные рекомендации.

1. Эндотрахеальные трубки должны быть разового пользования, стерилизация их должна производиться холодным способом в заводских условиях.

2. После наркоза, проведения искусственной вентиляции легких аппараты, эле­менты дыхательного контура подвергаются обработке антисептическими химичес­кими средствами. Аппараты обрабатывают в собранном виде. Может быть использо­ван 0,5% спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата: 1 мл 20% водного раствора хлоргексидина растворяют в 40 мл 96% этилового спирта. Смесь заливают в испари­тель наркозного аппарата или увдажнитель аппарата для искусственной вентиляции. Вентиляцию проводят по полузакрытому контуру в течение 1 ч при скорости газото­ка 2 л/мин. Затем остатки антисептика удаляют, и аппарат проветривают в течение 15 мин по полуоткрытому контуру.

В качестве антисептика в подобных ситуациях можно использовать 40% водный раствор формальдегида (формалин). Для этого в испаритель или увлажнитель зали­вают 100 мл формалина и проводят вентиляцию в течение 20 мин. Затем удаляют ос­татки формалина, заливают раствор нашатырного спирта и продолжают вентиляцию до полного исчезновения запаха аммиака.

Для стерилизации аппаратов в собранном виде можно применить газовый метод (с использованием окиси этилена) или у-излучение.

3. Если аппараты были применены у больных с гнойными заболеваниями, тубер­кулезом легких или дыхательных путей, производят разборку дыхательного контура (снимают шланги, присоединительные элементы, крышки клапанных коробок, ды­хательный мешок, адсорбер). Все детали обязательно промывают под струей теплой воды, затем замачивают в горячем моюшем растворе А или Б (см. Стерилизация ин­струментов) на 15 мин. В этом же растворе каждую деталь моют ватно-марлевым там­поном в течение 30 с, после чего прополаскивают проточной, а затем дистиллиро­ванной водой. Собственно стерилизапионную обработку деталей проводят 0,5% вод­ным раствором хлоргексидина, помещая их в емкости на 30 мин, или 3% раствором перекиси водорода (80 мин), или 3% раствором формальдегида (30 мин). В после­днем случае при инфицировании микобактериями туберкулеза экспозицию увели­чивают до 90 мин. Оптимальный вариант — использование в подобных ситуациях пластиковых шлангов, масок одноразового пользования.

После обработки антисептиком детали тщательно промывают стерильной водой в течение J0 мин, сушат и хранят в асептических условиях до использования.

Стерилизация эндоскопической аппаратуры:.--'

Проблема инфекции при эндоскопических исследованиях стоит остро в связи с опасностью заражения больных и персонала вирулентными микроорганизмами.

Основными этапами стерилизации эндоскопических приборов и инструментов являются их механическая очистка, промывание, предстерилизационная обработка и стерилизация, просушивание и хранение.

Для очистки эндоскопов используют раствор А или Б (см. Стерилизация инстру­ментов).

После окончания эндоскопического исследования с эндоскопа немедленно уда­ляют загрязнения (желудочный, кишечный сок, слизь, кровь и пр.) механическим путем с использованием моющих средств (раствор А или Б): с наружной поверхности — с помощью тканевых салфеток, из каналов (биопсийного, операционного) — спе­циальной щеткой, а также путем подачи в них достаточного количества воздуха, воды или раствора нейтрального мыла; жесткие эндоскопы перед очисткой разбирают на комплектующие детали.

Для обработки эндоскопов применяют 0,5% водный или спиртовой раствор хлор­гексидина биглюконата, 70% этиловый спирт, 2,5% раствор глугарового альдегида, препарат «Сайдекс», 3% и 6% растворы перекиси водорода при температуре 20±2 "С.

Кроме метода погружения, возможно также 3-кратное протирание салфетками наружной поверхности рабочей части эндоскопа (последовательно, сначала одной салфеткой, интенсивно смоченной в антисептическом растворе, затем, после запол­нения каналов эндоскопа раствором на 15 мин, - другой и третьей).

Части эндоскопа обрабатывают растворами антисептиков путем погружения в эмалированную или стеклянную емкость, закрытую крышкой, так же погружают де­тали жестких эндоскопов (за исключением оптических частей приборов и гибких ча­стей фиброэндоскопов). В последние годы появились новые, так называемые сверх­герметичные модели фиброскопов, которые можно полностью погружать в антисеп­тический раствор. Каналы заполняют этим раствором с помощью шприца или электроотсоса.

Разработаны специальные установки (моющие машины) для предстерилизацион-ной очистки и стерилизации гибких эндоскопов, различающиеся объемом дезинфи­цирующего средства, заливаемого в специальную ванну. раствора можно приготовить 10 л рабочего раствора, разбавив его дистиллированной водой. Рабочий раствор годен к применению в течение дня. При приготовлении ра­створа необходимо работать в резиновых перчатках для предупреждения ожогов кон­центрированным раствором муравьиной кислоты или перекиси водорода. Обработ­ка рук предусматривает их предварительное мытье в течение 1 мин проточной водой с мылом. Затем кисти и предплечья до уровня средней трети моют салфетками в тазу с раствором первомура в течение 1 мин и осушают стерильными салфетками. В од­ном тазу обработку рук могут производить 5 человек.

Обработка рук хлоргексидина биглюконатом. Выпускается в виде 20% водного ра­створа. Для обработки рук готовят 0.5% спиртовой раствор: к 500 мл 70% спирта до­бавляют 12,5 мл 20% раствора хлоргексидина биглюконата. Предварительно моют руки проточной водой с мылом, осушают стерильными салфетками или полотенцем, а за­тем в течение 2—3 мин протирают марлевым тампоном, смоченным приготовленным раствором.

Обработка рук препаратами АХД, евросепт. Эти средства содержат такие антисеп­тики, как этинол, хлоргексидин, эфир полиольной жирной кислоты. Несколько мил­лилитров раствора выливают на руки и протирают кожу рук до средней трети пред­плечий дважды по 2—3 мин. Предварительно руки моют в течение 1 мин.

Ускоренные способы обработки рук применяют в амбулаторной практике или в вы­нужденных (например, военно-полевых) условиях. Для ускоренного обеззаражива­ния рук используют пленкообразующий препарат церигель, отличающийся сильным бактерицидным действием. В его состав входят поливинилбутирол и 96% этиловый спирт. Руки моют водой с мылом, тщательно осушают. На ладонь наливают 3—4 мл церигеля и тщательно в течение 10 с смачивают им пальцы, ногтевые ложа и валики, кисти и нижнюю часть предплечья. Полусогнутые пальцы держат в разведенном по­ложении в течение 2-3 мин, пока на коже не образуется пленка церигеля, обладаю­щая защитными и бактерицидными свойствами. По окончании операции пленка лег­ко снимается марлевыми шариками, смоченными спиртом.

Обработка рук может быть произведена путем протирания кожи 96% этиловым спиртом в течение 10 мин (способ Бруна) или в течение 3 мин 2% спиртовым раство­ром йода.

Подготовка операционного поля

Предварительная подготовка места предполагаемого операционного разреза (опе­рационного поля) начинается накануне операции и включает общую гигиеническую ванну, смену белья. В день операции проводят сбривание волос сухим способом не­посредственно в месте операционного доступа, затем кожу протирают спиртом.

Перед хирургическим вмешательством на операционном столе поле операции широко смазывают 5% спиртовым раствором йода. Непосредственно место опера­ции изолируют стерильным бельем и вновь смазывают 5% спиртовым раствором йода. Перед наложением и после наложения швов на кожу ее обрабатывают тем же спирто­вым раствором. Этот способ известен как способ Гроссиха—Филончикова. Для обра­ботки операционного поля используют такие препараты йода, как йодонат, бетадин.

При непереносимости йода кожей у взрослых больных и у детей обработку опера­ционного поля проводят 1% спиртовым раствором бриллиантового зеленого (способ Баккала). Для обработки операционного поля используют 0,5% спиртовой раствор гибита-на (хлоргексидина биглкжонат), как и для обработки рук хирурга перед операцией.

При экстренной операции подготовка операционного поля заключается в сбри-вании волос, обработке кожи 0,5% раствором нашатырного спирта, а затем одним из описанных выше способов.

ПРОФИЛАКТИКА ИМПЛАНТАЦИОННОГО ИНФИЦИРОВАНИЯ РАН

Под имшашпаиией понимают внедрение, вживление в организм человека различных материалов, тканей, органов, протезов.

Инфицирование воздушным или контактным путем обусловливается краткос­рочным воздействием в период выполнения тех или иных хирургических манипу­ляций (перевязка, операция, лечебные манипуляции, диагностические методы). При внедрении микрофлоры с имплантируемыми материалами (имплантационное ин­фицирование организма) она находится в организме человека в течение всего пе­риода пребывания имплантата. Последний, являясь инородным телом, поддержи­вает развивающийся воспалительный процесс, и лечение такого осложнения будет безуспешным до тех пор, пока не произойдет отторжение или удаление имплантата (лигатуры, протеза, органа). Возможна с самого начала (за счет образования соеди­нительнотканной капсулы) изоляция микрофлоры вместе с имплантатом с образо­ванием «дремлющей» инфекции, которая может проявиться спустя длительное вре­мя (через месяцы, годы).

К материалам, имплантируемым в организм человека, относятся шовный матери­ал, металлические скрепки, скобки, а также протезы сосудов, суставов, полотно из лавсана, капрона и других материалов, ткани человека и животных (сосуды, кости, твердая мозговая оболочка, кожа), органы (почка, печень, поджелудочная железа и др.)» дренажи, катетеры, шунты, кава-фильтры, сосудистые спирали и др.

Все имплантаты должны быть стерильными. Стерилизация их проводится различ­ными способами (в зависимости от вида материала), но с соблюдением следующих условий: у-излучение, автоклавирование, химическая, газовая стерилизация, кипя­чение. Многие протезы выпускаются в специальных упаковках, стерилизованные в заводских условиях у-излучением.

Наибольшее значение в возникновении имплантационной инфекции имеет шов­ный материал. Существует более 40 его видов. Для соединения тканей во время опе­рации используют нити различного происхождения, металлические скрепки, скоб­ки, проволоку.

Применяют как рассасывающиеся, так и нерассасывающиеся нити. Рассасываю­щимися натуральными нитями являются нити из кетгута. Удлинение сроков рассасы­вания кетгута достигается импрегнацией нитей металлами (хромированный, сереб­ряный кепуг). Используют синтетические рассасывающиеся нити из дексона, вик-рила, окцилона и др. К нерассасывающимся натуральным нитям относятся нити из натурального шелка, хлопка, конского волоса, льна, к синтетическим — нити из кап­рона, лавсана, дакрона, нейлона, фторлона и др. Для соединения (сшивания) тканей применяют атравматичный шовный матери­ал. Он представляет собой шовную нить, запрессованную в иглу, поэтому при прока­лывании тканей, проведении нитей через прокольный канал ткани не травмируются.

Шовный материал должен удовлетворять следующим основным требованиям:

1) иметь гладкую, ровную поверхность и не вызывать при проколе дополнитель­ного повреждения тканей;

2) обладать хорошими манипуляционными свойствами — хорошо скользить в тка­нях; быть эластичным (достаточная растяжимость предупреждает сдавление и некроз тканей при их нарастающем отеке);

3) быть прочным в узле; не обладать гигроскопическими свойствами и не разбу­хать;

4) быть биологически совместимым с живыми тканями и не оказывать аллерги­ческого воздействия на организм;

5) разрушение нитей должно совпадать со сроками заживления раны.

Нагноение ран происходит значительно реже при использовании шовных мате­риалов, обладающих антимикробной активностью за счет введенных в их структуру противомикробных препаратов (летилан-лавсановые, фторлоновые, ацетатные и дру­гие нити, содержащие нитрофурановые препараты, антибиотики и т.д.). Синтетичес­кие нити, содержащие антисептические средства, обладают всеми достоинствами шовных материалов как таковых и в то же время оказывают антибактериальное дей­ствие.

Шовный материал стерилизуют у-излучением в заводских условиях. Атравматич­ный шовный материал выпускают и стерилизуют в специальной упаковке, обычный материал — в ампулах. Атравматичные нити в упаковке и ампутированные мотки шелка, кетгута, капрона и тл. хранят при комнатной температуре и используют по мере необходимости. Металлический шовный материал (проволока, скобки) стери­лизуют в автоклаве или кипячением, льняные или хлопчатобумажные нити, нити из лавсана, капрона — в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, лен, хлопок можно стерили­зовать по способу Кохера. Это вынужденный метод, и он предусматривает предвари­тельную тщательную механическую очистку шовного материала горячей водой с мылом. Мотки моют в мыльной воде в течение 10 мин, дважды сменяя воду, затем отмывают от моющего раствора, высушивают стерильным полотенцем и наматыва­ют на специальные стеклянные катушки, которые помещают в банки с притертой пробкой и заливают эфиром на 24 ч для обезжиривания, после чего перекладывают в банки с 70% спиртом на такой же срок. После извлечения из спирта шелк кипятят в течение 10—20 мин в растворе сулемы 1:1000 и перекладывают в герметически закры­вающиеся банки с 96% спиртом. Через 2 сут проводят бактериологический контроль; при отрицательном результате посева материал готов к применению. Синтетические нити можно стерилизовать кипячением в течение 30 мин.

Стерилизация кетгута. Термическая обработка кетгута не применяется, в заводс­ких условиях его стерилизуют у-лучами; в основном именно такие нити используют­ся в хирургии. Однако можно простерилизовать кетгут в больничных условиях. Сте­рилизация кетгута химическим способом предусматривает предварительное обезжи­ривание, для чего свернутые колечками нити кетгута помешают в герметически закрывающиеся банки с эфиром на 24 ч. При стерилизации по Клаудиусу эфир из банки сливают и колечки кетгута заливают на 10 сут водным раствором Люголя (йода чистого — 10 г, йодида калия - 20 г, дистиллированной воды — до 1000 мл), затем заменяют раствор Люголя свежим и оставляют в нем кетгут еще на 10 суп После этого раствор Люголя заменяют 96% спиртом. Через 4—6 сут производят посев на сте­рильность.

Метод Губарева предусматривает стерилизацию кетгута спиртовым раствором Люголя (чистого йода и йодида калия - по 10 г, 96% этилового спирта — до 1000 мл). После обезжиривания эфир сливают и заливают кетгут раствором Люголя на 10 суг, после замены раствора новым кетгут оставляют в нем еще на 10 сут. После бактерио­логического контроля при благоприятных результатах разрешают использование ма­териала.

Стерилизация протезов, конструкций, сшивающих материалов. Метод стерилизации в условиях больницы определяется видом материала, из которого изготовлен имп-лантат. Так, металлические конструкции (скрепки, скобки, проволока, пластинки, штифты, гвозди, винты, шурупы, спицы) стерилизуют при высокой температуре в сухожаровом шкафу, автоклаве, кипячением (как нережущие хирургические инстру­менты). Протезы сложной конструкции, состоящие из металла, пластмасс (клапаны сердца, суставы), стерилизуют с помощью химических антисептических средств (на­пример, в растворе хлоргексидина) или в газовых стерилизаторах.

Профилактика имплантационной инфекции при трансплантации органов и тка­ней предусматривает взятие органов в стерильных условиях, т.е. приближенных к ра­боте операционных. Тщательное соблюдение асептики при этом предусматривает подготовку рук и одежды хирургов, стерильное операционное белье, обработку опе­рационного поля, стерилизацию инструментов и т.д. Орган, извлеченный в стериль­ных условиях (после промывания его стерильным раствором, а при необходимости отмывания сосудов от крови и протоков - от биологических жидкостей), помещают в специальный стерильный герметичный контейнер, обложенный льдом, и достав­ляют к месту трансплантации.

Протезы из лавсана, капрона и других синтетических материалов (сосуды, клапа­ны сердца, сетка для укрепления брюшной стенки при грыжесечении и др.) стерили­зуют кипячением или помещая их в антисептические растворы. Протезы, стерилизо­ванные в растворе антисептика, должны тщательно промываться стерильным изото­ническим раствором хлорида натрия перед имплантацией их в организм человека.

Госпитальная инфекция Госпитальная (назокомиальная) инфекция: болезни или осложнения заболеваний или операций, возникновение которых связано с инфицированием больных в хирургическом стационаре.

Первичный источник инфекции — больные с гнойными заболеваниями.

Микроорганизмы через предметы, воздух, белье могут в хирургическом стацио­наре переходить от одного больного к другому. Чаще встречаются стафилококк, ки­шечная палочка, протей, клебсиеллы, синегнойная палочка. Микробная флора от­личается высокой устойчивостью к антибактериальным средствам. У ослабленных, оперированных больных эта флора может вызвать развитие гнойных осложнений. Инфицирование возможно как из экзогенных, так и из эндогенных источников, куда госггитальная флора попала ранее: носоглотка, зев, кожа больного. Возможно разви­тие массового заболевания (осложнения) — вспышка госпитальной инфекции.

Для борьбы с этой инфекцией важное значение имеют организационные мероп­риятия: строгий санитарный режим отделения; закрытие отделений на тщательную санитарную обработку при вспышке инфекции; сокращение сроков до- и послеопе­рационного пребывания больных в стационаре; рациональная антибактериальная терапия (смена антибактериальных средств, бактериологический контроль за эф­фективностью терапии), использование комбинированных методов антисептики, применение закрытых методов дренирования и др.

Проблемы ВИЧ-инфицирования в хирургии Распространение СПИДа среди населения создает угрозу заражения персонала хирургических стационаров, контактирующего с кровью инфицированных пациен­тов во время операций, перевязок, вливаний, инъекций, пункций, взятия крови для исследования, при диагностических процедурах и др.

Профилактические мероприятия предусматривают своевременное выявление инфицированных больных, для чего всех пациентов хирургических стационаров об­следуют на ВИЧ. С целью выявления и изоляции больных СПИДом при клиничес­ком обследовании учитываются такие проявления болезни, как пневмоцистоз, пнев­мония, саркома Калоши, наличие иммунодефицита, лимфаденопатия, диарея, по­худание, кандидоз дыхательных путей. Экстренное исследование крови на антиген ВИЧ позволяет подтвердить или отвергнуть диагноз у больных этой группы.

Правила личной безопасности персонала предусматривают (в соответствии с при­казом № 86 от 30.08.89 Минздрава СССР) необходимость работы в резиновых пер­чатках при выполнении любых манипуляций в хирургических стационарах, любом контакте с кровью и биологическими жидкостями больных. Кроме того, во время операции у ВИЧ-инфицированных необходимо применять специальные маски и очки; при попадании крови, биологических жидкостей на различные предметы, кожу, слизистые оболочки необходима обработка их антисептиками. Хирургические инст­рументы после использования замачивают в 3% растворе хлорамина (30 мин) или 6% растворе перекиси водорода (90 мин) с последующей обычной предстерилизацион-ной обработкой.

Важное значение для профилактики имеет широкое применение шприцев, инст­рументов, систем для внутривенного вливания разового пользования.