Строение сосудов хориоидеи.

Артерии. Артерии не отличаются от арте­рий других локализаций и обладают средним мышечным слоем и адвентицией, содержащей коллагеновые и толстые эластические волокна (рис. 3.8.56). Мышечный слой от эндотелия от­делен внутренней эластической мембраной. Во­локна эластической мембраны переплетаются с волокнами базальной мембраны эндотелио-цитов [496, 959].

По мере уменьшения калибра артерии пре­вращаются в артериолы. При этом исчезает сплошной мышечный слой стенки сосудов.

Сосуды и сосудистая оболочка глазного яблока

319

 

Рис. 3.8.56. Микроскопическое строение сосудов хорио-идеи:

а — артерия и вена хориоидеи крупного калибра (стенка арте­рии обладает толстым средним слоем и адвентицией); б, в — особенности ультраструктуры капиллярных сосудов хориоидеи (/—мембрана Бруха; 2 —эндотелиальная выстилка капилляра; 3 — ядро эндотелиальной клетки; 4 —дубликатура цитоплазмати-ческой мембраны с образованием «пор»)

Вены. Вены окружены периваскулярной оболочкой, вне которой располагается соеди­нительная ткань. Просвет вен и венул выстлан эндотелием. Стенка содержит неравномерно распределенные гладкомышечные клетки в не­большом количестве. Диаметр самых больших вен равен 300 мкм, а самых маленьких, прека-пиллярных венул, — 10 мкм [154, 1028].

Капилляры. Капилляры хориокапиллярного слоя сосудистой оболочки имеют довольно большой просвет, позволяющий проходить не­скольким эритроцитам. Выстланы они эндоте-лиальными клетками, снаружи которых лежат перициты (рис. 3.8.56, б, в). Количество пери­цитов на одну эндотелиальную клетку хориока­пиллярного слоя довольно велико. Так, если в капиллярах сетчатки это соотношение рав­но 1:2, то в сосудистой оболочке— 1:6 [370, 708, 933]. Перицитов больше в фовеолярной об­ласти. Перициты относятся к сократительным клеткам и участвуют в регуляции кровоснабже­ния. Особенностью капилляров хориоидеи яв­ляется то, что они фенестрированы, в результа-

те чего их стенка проходима для маленьких мо­лекул, включая флюоросцеин и некоторые бел­ки [ill, 1007]. Диаметр пор колеблется от 60 до 80 мкм. Закрыты они тонким слоем цито­плазмы, утолщенной в центральных участках (30 мкм). Фенестры располагаются в хориока-пиллярах со стороны, обращенной к мембране Бруха [496, 527] (рис. 3.8.57, в). Между эндо-телиальными клетками артериол выявляются типичные зоны замыкания.

Межклеточные контакты эндотелиальных клеток хориокапилляров особого типа. Близкие по строению контакты выявляются в синусои­дах печени и венулах брыжейки [1208]. Выявля­ются неравномерно распределенные зоны замы­кания и десмосомы, которые не полностью гер­метичны [875, 1028]. Между эндотелиальными клетками и перицитами существуют щелевые контакты [1028].

Иннервация сосудистой оболочки. Сосудис­тая оболочка иннервируется симпатическими и парасимпатическими волокнами, исходящими из ресничного, тройничного, крылонебного и верх­него шейного ганглиев (рис. 3.8.57). В глазное яблоко поступают они с ресничными нервами.

Рис. 3.8.57. Особенности вегетативной иннервации уве-ального тракта глаза:

/ — крылонебный ганглий; 2 —верхний шейный симпатический

ганглий; 3 — ресничный ганглий; 4 — тройничный ганглий; 5 —

пятый нерв

В строме сосудистой оболочки каждый нерв­ный ствол содержит 50—100 аксонов, теряю­щих миелиновую оболочку при проникновении в нее, но сохраняющих шванновскую оболочку.

320

Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА

 

Постганглионарные волокна, исходящие из ресничного ганглия, остаются миелинизиро-ванными.

Сосуды надсосудистой пластинки и стромы сосудистой оболочки исключительно обильно снабжены как парасимпатическими, так и сим­патическими нервными волокнами (рис. 3.8.58).

Рис. 3.8.58. Особенности распределения нервных воло­кон между сосудами сосудистой оболочки

Симпатические адренергические волокна, ис­ходящие из шейных симпатических узлов, обла­дают сосудосуживающим действием.

Парасимпатическая иннервация сосудистой оболочки исходит от лицевого нерва (волокна, идущие из крылонебного ганглия), а также из глазодвигательного нерва (волокна, идущие из ресничного ганглия).

Последние исследования значительно рас­ширили наши знания относительно особеннос­тей иннервации сосудистой оболочки. У различ­ных животных (крыса, кролик) и у человека артерии и артериолы сосудистой оболочки со­держат большое количество нитрэргических и пептидэргических волокон, образующих густую сеть. Эти волокна приходят с лицевым нервом и проходят через крылонебный ганглий и не-миелинизированные парасимпатические ветви от ретроглазного сплетения [328, 1202]. У че­ловека, кроме того, в строме сосудистой обо­лочки имеется особая сеть нитрэргических ган-глиозных клеток (положительны при выявле­нии НАДФ-диафоразы и нитроксидной синте-тазы), чьи нейроны связаны друг с другом и с периваскулярной сетью (рис. 3.8.59). Отмече­но, что подобное сплетение определяется толь­ко у животных, имеющих фовеолу.

Ганглиозные клетки сконцентрированы в основном в височных и центральных областях сосудистой оболочки, по соседству с макуляр-ной областью. Общее количество ганглиозных клеток в сосудистой оболочке порядка 2000. Распределены они неравномерно. Наибольшее их количество обнаруживается с темпоральной

стороны и центрально. Клетки маленького диа­метра (< 10 мкм) располагаются по периферии [328]. Диаметр ганглиозных клеток увеличи­вается с возрастом, возможно, из-за накопле­ния в них липофусциновых гранул.

В нейронах выявлены нитрэргические транс­миттеры. Подобные нейротрансмиттеры обес­печивают расширение сосудов. Обнаруживают­ся они в периваскулярных нервах различных органов [116, 757, 787, 1081]. Этот медиатор вызывает также расслабление гладких мышц различных органов, например кишечника и тра­хеи [423], желчного пузыря [1059].

В некоторых органах типа сосудистой обо­лочки нитрэргические нейротрансмиттеры вы­являются одновременно с пептидэргическими, также обладающими сосудорасширяющим дей­ствием [365, 614, 739, 1059]. Пептидэргичес-кие волокна [1118], вероятно, исходят из крылонебного ганглия и проходят в лицевом и большом каменистом нерве [1118]. Вероятно, что нитро- и пептидэргические нейротрансмит­теры обеспечивают вазодилятацию при стиму­ляции лицевого нерва.

Периваскулярное ганглиозное нервное спле­тение расширяет сосуды сосудистой оболочки, возможно регулируя кровоток при изменении внутриартериального кровяного давления. Оно защищает сетчатку от повреждения тепловой энергией, выделяющейся при ее освещении. Flugel et al. [328] предложили, что ганглиоз­ные клетки, расположенные у фовеолы, защи­щают от повреждающего действия света имен­но тот участок, где происходит наибольшая фо­кусировка света. Выявлено, что при освещении глаза существенно увеличивается кровоток в прилежащих к фовеоле участках сосудистой оболочки.

Рис. 3.8.59. Ганглиозная клетка сосудистой оболочки типичного строения, к которой подходит и контакти­рует нервное волокно:

/ — ганглиозная клетка; 2 —крупное ядрышко ганглиозной клетки; 3 — нервное волокно

Сосуды, и сосудистая оболочка глазного яблока

321

 

Особенности кровообращения в сосудистой оболочке. Особенности кровообращения уве-ального тракта изучались интенсивно на про­тяжении многих лет как в эксперименте, так и в клинике. В 1975 г. Bill [114] суммировал име­ющиеся данные и привел свою концепцию фи­зиологии хориоидеи.

У обезьян хориоидальный кровоток исклю­чительно интенсивный, приблизительно в 20 раз выше, чем в сосудах сетчатой оболочки (радужка — 8 ± 1 мг/мл; ресничное тело — 81 ±6 мг/мл; сосудистая оболочка — 677 ± ±67 мг/мл; сетчатка — 34 ± 2 мг/мл). По­скольку интенсивность артериального крово­тока столь высока, насыщенность кислородом венозной крови только на 3% ниже, чем насы­щенность артериальной крови. И это несмотря на то, что кислород отдается наружной части сетчатой оболочки. Артериовенозные анастомо­зы играют небольшую роль в поддержании вы­сокой насыщенности кислородом венозной кро­ви. Предлагается, что высокий уровень увеаль-ного кровотока обеспечивает терморегуляцию внутриглазных оболочек, компенсируя сниже­ние температуры в переднем отделе глаза и предотвращая перегревание сетчатки при ее освещении светом.

Регуляция кровотока. Механизмы регуля­ции кровотока в сетчатке и сосудистой оболоч­ке существенно отличаются. Если в сетчатке преобладают механизмы ауторегуляции, то в хориоидее эти функции берут на себя симпати­ческие нервные сплетения.

Интенсивность кровотока в сетчатке незна­чительно увеличивается при повышении кон­центрации рСО₂ [347], а гипероксия вызывает небольшое сужение сосудов. При этом интен­сивность кровотока снижается. Особенностью кровообращения сетчатки является и то, что на него не влияет изменение внутрисосудистого давления, что наблюдается, например, при из­менении внутриглазного давления.

Кровообращение в хориоидее также усили­вается при увеличении концентрации рСО₂, но более значительно. При повышении парциаль­ного давления кислорода интенсивность крово­тока практически не изменяется [112, 113].

Кровообращение хориоидеи не автономно, а регулируется нервными механизмами [248]. Ауторегуляция кровообращения выявлена толь­ко в сосудах ресничного тела и радужки. При стимуляции симпатической нервной системы наступает уменьшение просвета сосудов хорио­идеи. При этом падает внутриглазное давление из-за уменьшения объема крови. Подобная ре­акция характерна для а-адренэргического типа иннервации [112, 113].

Сосуды хориоидеи находятся обычно в со­стоянии небольшого сокращения (сосудосужи­вающий тонус). Предполагают, что такое состо­яние защищает сетчатку от гиперперфузии со­судов, наблюдающейся при ряде заболеваний,

сопровождающихся повышением внутриартери-ального давления [119]. Вазомоторные терми­налы заканчиваются в основном на артериолах и реже на артериях. Иннервируются также ве­ны и венулы. Отсутствует иннервация хорио-капилляров [933]. На холинэргическую стиму­ляцию сосуды хориоидеи отвечают расшире­нием просвета [1037].

В увеальном тракте выявлены также нит-ро- и пептидэргические волокна, обладающие сосудорасширяющим действием [933]. Подхо­дят они к глазу по ходу лицевого нерва, обра­зуя синапсы в крылонебном ганглии [328, 786, 1037, 1118].

Капилляры сосудистой оболочки и реснич­ных отростков напоминают таковые слизистой оболочки кишечника и почки. Исследование проницаемости этих капилляров выявило, что стенка пропускает большие молекулы. Дальней­шее продвижение молекул из сосудистой обо­лочки в сетчатку невозможно в результате на­личия между пигментными клетками эпителия сетчатки плотных межклеточных контактов [222, 399, 1016]. Утечка белка из просвета ка­пилляров сосудистой оболочки или ресничных отростков превышает подобную утечку в поч­ках в пять раз, а в сердечной и скелетной мыш­цах в десять [120]. Благодаря такой высокой пропускной способности стенки сосудов, кон­центрация IgG в строме ресничных отростков и строме сосудистой оболочки составляет 60— 70% концентрации этого белка в плазме крови. Это свойство создает высокое осмотическое давление в ткани сосудистой оболочки (превы­шает давление сетчатки примерно на 15 мм ртутного столба). Разница в осмотическом дав­лении между сосудистой оболочкой и сетчаткой вызывает фильтрацию жидкости из сетчатки по направлению к сосудистой оболочке и является силой, которая придавливает сенсорную часть сетчатки к пигментному эпителию.

Наличие высокой проницаемости сосудов хориоидеи способствует транспорту в сетчатую оболочку витамина А, находящегося в макромо-лекулярном комплексе ретинол-связанного бел­ка с преальбумином. Возможность выхода та­кой большой молекулы обеспечивается наличи­ем фенестр. Высока пропускная способность сосудов и для низкомолекулярных веществ ти­па глюкозы. Причем она более чем в двадцать раз выше относительно сосудов мышцы сердца и в восемьдесят относительно сосудов скелет­ной мышцы. Это резко отличает сосуды хорио­идеи от сосудов сетчатой оболочки.

Ишемия хориоидеи. На протяжении многих десятилетий непонятной оставалась причина развития ишемии хориоидеи при столь высокой насыщенности ее анастомозирующими сосуда­ми. Причем участки ишемии хориоидеи строго очерчены [1198, 1199].

Механизмы развития локальной ишемии бы­ли непонятны и по следующим причинам:

322

Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА

 

1. Кровоток в капиллярах хориоидеи один из
самых интенсивных — 800—1200/100 гр/мин.

2. К хориоидее направляется 85% всего
объема крови, направленного к глазному ябло­
ку (к сетчатке только 4%).

3. Кровь в посткапиллярных кровеносных
сосудах хориоидеи столь же богата кислоро­
дом, как и артериальная кровь [117, 293, 828].

4. Кровообращение в сосудах хориоидеи не
ауторегулируется, поскольку насыщение кро­
ви углекислым газом минимальное [114, 117,
1196].

5. Максимальная стимуляция симпатичес­
кой нервной системы приводит к уменьшению
объема кровообращения только на 60% [114,
117, 1196]; стенка капиллярных сосудов не гер­
метична и проницаема для различных веществ,
включая белки.

Таким образом, имеющиеся анатомические и физиологические сведения не позволяли иссле­дователям объяснить механизмы развития ише­мии хориоидеи. Тем не менее, участки ишемии, а также инфаркта хориоидеи, не столь уж и редкое явление [77, 333, 515].

Были проведены многочисленные экспери­ментальные исследования, сводившиеся к вве­дению в кровяное русло микрочастиц шаровид­ной формы [80, 210, 464, 893, 1198, 1199] или флюоресцеина [77, 257, 460, 515, 1108]. Но и при этом, объяснения этому явлению найдено не было. Лишь использование флюоресцеина позволило наблюдать наполнение участков хо-риокапиллярных сосудов флюоросцеином в ви­де секторов. Последовательность и площадь наполнения сосудов кровью четко соответст­вовала строению «хориокапиллярной дольки». Долька начинала наполняться кровью с цент­ральных участков и лишь спустя несколько се­кунд кровь поступала к периферии. Поскольку строение «дольки» в различных участках уве-ального тракта различно (см. выше), различна и скорость кровенаполнения хориоидеи в раз­личных участках.

Количественные и качественные характерис­тики кровообращения в «дольках» зависят от многих причин и, в первую очередь, от внутри­глазного давления [257]. Установлено также, что венозная кровь отводится от каждой «доль­ки» в отдельности. При этом кровь соседних «долек» не смешивается. По всей видимости, такая система кровообращения предопределя­ет существование наиболее быстрого и корот­кого пути оттока венозной крови из хориоидеи. С другой стороны, возникает вероятность в определенных условиях возникновения ишемии хориоидеи на границе «долек». Наиболее часто ишемия наступает при окклюзии коротких зад­них ресничных артерий, а также сосудов глаз­ницы [460, 470].

Развитие ишемии хориоидеи неблагоприятно влияет на строение и функции сетчатой оболоч­ки. Исчезают фоторецепторы наружного ядер-

ного слоя, наступает миграция клеток пигмент­ного эпителия в сетчатку.

Таким образом, на основании приведенных данных видна несостоятельность концепции о невозможности развития ишемии хориоидеи из-за большого количества анастомозов между сосудами.

Возрастные изменения сосудистой оболоч­ки. В сосудистой оболочке глаза с возрастом уменьшается количество эластической ткани [1049], а также уменьшается толщина и самой сосудистой оболочки [868]. Вокруг крупных со­судов формируется широкая прослойка волок­нистой ткани. При этом сосуды хориоидеи на­чинают напоминать сосуды радужки. В допол­нение к описанному склерозу сосудистой стенки изменяется также число и калибр сосу­дов. Приведенные структурные изменения со­провождаются уменьшением скорости наполне­ния хориокапиллярного слоя, что показано при помощи флюоресцентной ангиографии. Появля­ются пятна гипофлюоресценции, хотя общая интенсивность свечения сохраняется независи­мо от возраста [525].

Регенерация увеального тракта. После по­вреждения любого участка увеального тракта наступает лишь заместительная регенерация. В эту область первоначально мигрируют клетки соединительной ткани (фибробласты), которые синтезируют межклеточное вещество и колла­ген, выполняющие дефект. Затем наступает организация волокнистой ткани с образованием соединительнотканного рубца. Рубец, как пра­вило, довольно интенсивно пигментирован, по­скольку в нем скапливаются зерна меланина, высвободившиеся из поврежденных стромаль-ных меланоцитов. Существуют определенные различия в скорости заместительной регенера­ции радужной оболочки. Это связано с тем, что после ее повреждения (радиальные разрывы) края раны расходятся. В таких случаях рубце­вания вообще не происходит.

Литература

1. Абрамов В. Г. Болезнь трансплантата рого­
вицы.— Ярославль: Верх.-Волж. кн. изд-во, 1972. —
215 с.

2. Абрамов В. Г. К вопросу об иннервации рогови­
цы // Офтальмол. журн.— 1959. — №6. — С. 358—
362.

3. Артемов А. В. Изменение дренажной зоны гла­
за и сосудов, осуществляющих ее трофику в возраст­
ном аспекте // Офтальмол. журн. — 1980. — № 7.—
С. 401—405.

4. Артемов А. В. Сравнительная характеристика
состояния тканей дренажной зоны глаза, сосудов ра­
дужки и цилиарного тела у больных системными сосу­
дистыми заболеваниями и простой глаукомой // Тез.
докл. Междунар. конф. офтальмологов городов-побра­
тимов Одессы. — Одесса, 1981, —С. 181-182.

5. Артемов А. В. Состояние дренажной зоны и со­
судов переднего отдела глаза у больных атероскле­
розом, гипертонической болезнью, сахарным диабетом

Литература

323

 

и открытоугольной глаукомой: Автореф. дис.... канд. мед. наук. — Одесса, 1982.— 20 с.

6. Беляев В. С. Склеропластика в лечении прогрес­
сирующей миопии. — М.: Изд-во Ин-та дружбы наро­
дов, 1977.— 229 с.

7. Боговягин В. Л., Франк Г. М. Субмикроскопичес­
кая организация и функциональные особенности мюл-
леровских клеток сетчатки // Биофизика,— 1962.—
Т. 7. — № 1 — С. 42—50.

8. Вызов А. Л. Потенциалы в глиальных клетках
сетчатки // В кн.: Функции нейроглии.—Тбилиси:
Мецниереба, 1979. — С. 49—59.

9. Вит Ь. В., Дмитриев С. К- Гемофтальмический
барьер при травме глаза // Офтальм. журн. — 1997. —
№ 2.— С. 143.

10. Bum В. В., Мальцев Э.В. Особенности репара­
ции повреждений эпителия роговицы и хрусталика у
животных, подвергшихся хроническому воздействию
малых доз ионизирующей радиации и интенсивному
световому облучению // Офтальм.  журн. — 1998. —
№1. —С. 69—73.

М.Вит В. В., Мальцев Э. В., Павлюченко К-П. Влияние повышенной инсоляции и малых доз ионизи­рующей радиации на регенерацию эпителия хрустали­ка // Офтальм. журн. — 1997. — № 5. — С. 445—448.

12. Вит В. В., Юмашева А. А., Бабанина Ю. Д.
Послеоперационные осложнения циркляжа различ­
ными материалами по данным экспериментальных
исследований // Офтальм. журн. — 1979. — № 4. —
С. 244—247.

13. Войно-Ясенецкий В. В., Думброва Н. Е. Ультра­
структура многослойной волокнистой ткани, образую­
щейся за десцеметовой оболочкой после ожога рого­
вицы серной кислотой // Офтальм. журн.— 1971.—
№8.— С. 599—603.

14. Войно-Ясенецкий В. В. О природе и регенера-
ционных свойствах клеток стромы и эндотелия рого­
вицы // В кн.: Материалы 3-й конференции по вопро­
сам регенерации и клеточного размножения, 1962. —
С. 28-30.

15. Войно-Ясенецкий В. В. Патологический рост
эндотелия при экспериментальном ожоге роговицы
серной кислотой // Материалы научн. конф., посвя­
щенной 90-летию со дня рождения В. П. Филатова,
Киев. 1965 —С. 19—20.

16. Войно-Ясенецкий В. В. Процесс приживления
роговичного трансплантата при внутричерепном по­
вреждении тройничного нерва // Офтальм. журн. —
1959. — № 3. — С. 170—176.

17. Войно-Ясенецкий В. В. Метаплазия тканей гла­
за при осложненном раневом процессе // В кн.: Усло­
вия регенерации органов и тканей у животных. — М.,
1965 — С. 45—49.

18. Войно-Ясенецкий В. В. Разрастание и изменчи­
вость тканей глаза при его заболеваниях и травмах. —
К.: Вища школа, 1979. — 224 с.

19. Калинина А. В. Глиальные клетки сетчатки ля­
гушки Rana ridibunda Pall // Арх. анат., гист. и эмб-
риол. — 1983. — Т. 84. — № 4. — С. 33—38.

20. Кашинцева Л. Т. Глаукома у больных сахарным
диабетом // Автореф. дис.... д-ра мед. наук. — М.,
1972.— С. 30.

21. Красновид Т. А., Вит В. В. Повреждение и вос­
становление функции клеток заднего эпителия роговой
оболочки после экстракции катаракты // Офтальмол.
журн. — 1995. — № 3. — С. 158

22. Мальцев Э. В. Хрусталик. — М.: Медицина,
1988.— С. 190.

23. Мальцев Э. В., Павлюченко К. П. Биологичес­
кие особенности и заболевания хрусталика. — Одесса:
Астропринт, 2002. — 445 с.

 

24. Назаренко Н.И., Вит В. В., Бабанина Ю. Д.
Динамика морфологических изменений оболочек гла­
за и прочности склеры после диатермокоагуляции //
Офтальм. журн. — 1981. — № 8. — С. 498—501.

25. Певзнер Л. 3. Биохимические особенности гли­
альных клеток как основа для участия нейроглии в
специфической активности нейронов // В кн.: Функции
нейроглии. — Тбилиси: Мецниерба, 1979. — С. 251 —
265.

26. Певзнер Л. 3. Функциональная биохимия нейро­
глии.—Л.: Наука, 1972.— 200 с.

27. Полунин Г. С, Макаров И., Шеремет Н. Осо­
бенности клинического течения отдельных видов луче­
вых катаракт // Вестн. офтальмол. — 1998. — № 5. —
С. 32—35.

28. Пучкшська Н. О. До питания про морфолопю
Hepeie i нервових закшчень poroeoi оболонки // Ме-
дичн. журн. — 1947. — № 16. — С. 340—356.

29. Пучывська Н. О. Морфолопчш особливост1 нер-
bjb ештелш роговоТ оболонки // В кн.: 36., присвяч.
Пям'ят1 О. В. Леонтовича (1869—1943). — К., 1948. —
С. 142—149.

30. Пучковская Н. А., Войно-Ясенецкий В. В. Вто­
ричные дистрофические и структурные изменения
в переднем отделе глаза. — М.: Медицина, 1985.—
С. 192.

31. Розенфельд И. А. Флюорометрия в офтальмоло­
гии. Обзор литературы // МРЖ. Офтальмология. —
1987. — № 4. —Т. 448.— С. 25—30.

32. Судакевич Д. И. Архитектоника системы внут­
риглазного кровоснабжения. — М.: Медицина, 1971. —
С. 111.

33. Тринчук В. В., Мальцев Э. В., Расина Д. Г.,
Бормусова Э. А. Гистологическая и гистохимическая
характеристика ожогов роговицы различной степени
тяжести // Тез. докл. 1-го укр. съезда анатомов, гис­
тологов и топографоанатомов.—Винница, 1980.—
С. 127—128.

34. Тринчук В. В., Мальцев Э. В., Расина Д. Г.,
Бормусова Э. А. Диэлектрические и патогистологичес-
кие параллели моделированных имических ожогов ро­
говой оболочки глаза // Офтальмол. журн. — 1985. —
№2.— С. 115—118.

35. Федоров С. #., Егорова Э. В. Хирургическое
лечение травматических катаракт с интраокулярной
коррекцией. — М.: Медицина, 1985. — 327 с.

36. Федоров С.Н., Ронкина Т. И., Явишева Т. М.
Эндотелий роговицы человека.—М., 1993. — С. 126.

37. Шибкова С. А. О ганглиозных клетках сетчатки
лягушки // Арх. анатомии, гистологии и эмбриоло­
гии. — 1 970. — Т. 9. — № 11. — С. 72—77.

38. Шибкова С. А. О ганглиозных клетках сетчат­
ки селахий // Арх. анатомии, гистологии и эмбриоло­
гии. — 1971. — Т. 60. — №3. — С. 21—28.

39. Школьник-Яррос Е. Г., Калинина А. В. Нейро­
ны сетчатки. — М.: Наука, 1986. — 205 с.

AO.Acharya S., Rodriguez /., Moreira Т. SPACR a novel interphotoreceptor matrix glycoprotein in human retina that interacts with hyaluronan // J Biol Chem. — 1998.— Vol. 273.— P. 31599—31606.

41. Acott T.S., Samples J. R., Bradley J. M. Trabe-
cular re-population by anterior trabecular meshwork
cells after laser trabeculoplasty // Am J Ophthalmol. —
1989.— Vol. 1. —P. 107—112.

42. Adler A. J., Martin K. /. Retinol-bilding in bovine
interphotoreceptor matrix // Biochem Biophys Res Com-
mun—1982.— Vol. 108.— P. 1601 — 1608.

AZ.Ahnelt P.K., Keri C, Kolb H. Identification of pedicles of putative blue sensitive cones in human and primate retina // J Comp Neurol. — 1990. —Vol. 293 — P. 39—53.

324

Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА

 

44. Ahnelt P. К., Kolb И., Pflug R. Identification of
a.subtype of cone photoreceptor likely to be blue sensi­
tive in the human retina // J Camp Neurol— 1987. —
Vol. 255 (18).— P. 34—40.

45. Ahnelt P., Kolb H. Horizontal cells and cone
photoreceptors in human retina: A Golgi-electron micro­
scopic study of spectral connectivity // J Compar Neu­
rology. — 1994. — Vol. 343. — P. 406—427.

46. Ahnelt P., Kolb H. Horizontal cells and cone
photoreceptors in primate retina: A Golgi-light micro­
scope study of spectral connectivety // J Comp Neu­
rol — 1994. — Vol. 343. — P. 387—405.

M.Aitken D., Friend J., Thoft R. A. Corneal re-epi-thelialization from the conjunctiva // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1988. — Vol. 29. — P. 224—231.

48. Aizawa K. The depth of the normal anterior
chamber // Acta Soc Ophthalmol.—1958. —Vol. 62.—
P. 2283—2289.

49. Al-Aswad L., Adorante J.S., Erickson К. E. Ef­
fects of cell volume regulators on outflow facility in calf
and human eyes in vitro (Abstract) // Invest Ophthal­
mol Vis Sci. — 1995. — Vol. 36. — P. 3331—3338.

50. Albona /., Purslowb P.P., Karwatowskic W.S.S.,
Eastyd D. L. Age related compliance of the lamina cri-
brosa in human eyes // Br J Ophthalmol. — 2000. —
Vol. 84.— P. 318—323.

51. Albona J. An investigation into the age-related
changes in the extracellular matrix of the human lamina
cribrosa // PhD thesis. — Bristol: University of Bristol.,
1995.

52. Alcala I., Maisel H. Biochemistry of lens plasma
membranes and cytoskeleton // In The Ocular Lens:
Structure, Function and Pathology / Ed. H. Maisel, Mar­
cel Dekker. — New York, 1985. — 169 p.

53. Allansmith M. R., Kajiyama G., Abelson M. B.
Plasma cell content of main and accessory lacrimal
glands and conjunctiva // Am J Ophthalmol. — 1976. —
Vol. 82 —P. 819—825.

54. Allen D.P., Low P.S., Dola A. Band 3 and an-
kyrin homologues are present in the eye lens: Evidence
for all major erythrocyte membrane components in same
non-erythroid cell // Biochem Biophys Res Commun. —
1987.—Vol. 149—P. 266—273.

bb.Allsopp R.C., Vaziri #., Patterson C, Gold­ stein S., Younglai E. V., Futcher A. B. Telomere length predicts replicative capacity of human fibroblasts // Proc Natl Acad Sci. — 1992. — Vol. 89. — P. 10114—10118.

56. Almegard В., Andersson S. E. Outflow facility
in the monkey eye: Effects of calcitonin gene-relat­
ed peptide, cholecystokinin, galanin, substance P and
capsaicin // Exp Eye Res. — 1990. — Vol. 51 —
P. 685—692.

57. Alvarado J. A., Van Horn С Muscle cell types of
the cat inferior oblique // In Lennerstrand G., Bach-y-
Rita P. (eds): Basic Mechanisms of Ocular Motility. —
Oxford Pergamon Press, 1975. — P. 15—45.

58. Alvarado J. A., Yun A.]., Murphy C.G. Juxta-
canalicular tissue in primary open angle glaucoma and
in nonglaucomatous normals // Arch Ophthalmol. —
1986.— Vol. 104.— P. 1517—1525.

59. Alvarado /., Murphy C, luster R. Age-related
changes in the basement membrane of the human cor­
neal epithelium // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1983.—
Vol. 24.— P. 1015—1021.

60. Alvarado /., Murphy C, luster R. Trabecular
meshwork cellularity in primary open angle glaucoma
and nonglaucomatous normals // Ophthalmology. —
1984.—Vol. 91. —P. 564—572.

61. Alvarado /., Murphy C, Polansky J. Age-related
changes in trabecular meshwork cellularity // Invest
Ophthalmol Vis Sci. — 1981. — Vol. 21. — P. 714—721.

 

62. Amalric P. Choroidal vessel occlusive syndromes
clinical aspects // Trans Am Acad Ophthalmol Otolaryn-
gol. — 1973. — Vol. 77. — P. 291—299.

63. Amalric P. Le territoire chorio-retinien de l'artere
ciliaire longue posterieure. Etude clinique // Bull Soc
Ophtalmol Fr. — 1963. — Vol. 63. — P. 342—350.

64. Ambati /., Canakis C.S., Miller G. V., Gragou-
das E. S. Diffusion of high molecular weight compounds
through sclera // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 2000. —
Vol. 41. —P. 1181 — 1185.

65. Anderson D. R. Scanning electron microscopy of
primate trabecular meshwork // Am J Ophthalol. —
1969.— Vol. 71. —P. 90—98.

66. Anderson D. R. Ultrastructure of human and
monkey lamina cribrosa and optic nerve head // Arch
Ophthalmol. — 1969. — Vol. 82. — P. 800—807.

67. Anderson D. R. Ultrastructure of the optic ner­
ve head // Arch Ophthalmol. — 1970. — Vol. 83.-
P. 63—68.

68. Anderson D. R., Braverman S. Re-evaluation of
the optic disc vasculature // Am J Ophthalmol. —
1976.— Vol. 82.— P. 165—172.

69. Anderson D. R., Hoyt W.F. Ultrastructure of
intraorbital portion of human and monkey optic nerve //
Arch Ophthalmol. — 1969.— Vol. 82. — P. 506—511.

70. Anderson D. R., Hoyt W.F., Hogan M. J. The
fine structure of the astroglia in the human optic nerve
and optic nerve head // Trans Am Ophthalmol Soc. —
1969.—Vol. 65.— P. 275—282.

7'1. Anderson D. R., Trobe J.D., Hood T. W. Optic tract ingury after anterior temporal lobectomy // Oph­thalmology. — 1989. — Vol. 96. — P. 1065—1070.

72. Anderson S., Sundar Raj S., Fife D., Wessel H.,
Sundar Raj N. Developmentally regulated appearance
of spliced variants of type XII collagen in the cornea
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 2000. — Vol. 41.-
P. 55—63.

73. Andley U., Hebert /., Morrison A. et al. Modu­
lation of lens epithelial cells proloferation by enhan­
ced prostaglandin synthesis after UVB exposure // In­
vest Opthalmol Vis Sci. — 1994. — Vol. 35, № 2.-
P. 375—381.

74. Andres К. Н. Morphological criteria for the differ­
entiation of mechanoreceptors in vertebrates // In: Sym­
posium Mechanorezeption Abhdlg Rhein Westf Akad
Wiss / Ed. J. Schwartzkopff, Westdeutscher Verlag, Op-
laden, 1974.— Vol. 53.— P. 135—141.

75. Anthony T. L, Pierce K. L., Stamer W. D., Re­
gan J. W. Prostaglandin F2 alpha receptors in the hu­
man trabecular meshwork // Invest Ophthalmol Vis
Sci.— 1998.— Vol. 38.— P. 1222—1228.

76. Araki M. Observations on the corrosion casts of
the choriocapillaris at the posterior pole // Acta Soc
Ophthalmol Jpn. — 1977. — Vol. 80. — P. 315—322.

77. Archer D., Krill A., Newell F. Fluorescein studies
of normal choroidal circulation // Am J Ophthalmol. —
1977.— Vol. 69.— P. 543.

78. Archer S. Molecular biology of visual pigments //
In «Neurobiology and Clinicak Aspects of the Outer
Retins / Eds. M. B. A. Djamgoz, S. N. Archer, S. Valler-
ga. — Chapman and Hall London, 1995.— P. 79—104.

79. Arentsen J. /., Rodrigues M. M., Laitsson P. R.
Histopathology of 150 trabeculectomy specimens in
glaucoma //Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1995.—
Vol. 16.— P. 32—38.

80. Ashton N. Anatomical study of Schlemm's canal
and aqueous veins by means of Neoprene casts II Aque­
ous veins // Br J Ophthalmol. — 1952.—Vol. 36.—
P. 265—273.

81. Ashton N. Anatomical study of Schlemm's canal
and aqueous veins by means of Neoprene casts I Aque-

Литература

325

 

ous veins // Br J Ophthalmol. -1951. —Vol. 35.— P. 291-299.

82. Ashton N. Observations on the choroidal cir­
culation // Br J Ophthalmol. — 1961.—Vol. 54.—
P. 1084—1091.

83. Ashton N., Brini A., Smith R. Anatomical studies
of the trabecular meshwork of the normal human eye //
Br J Ophthalmol. — 1956. Vol. 40. — P. 257—262.

84. Ashton N., Cunha-Vaz J. G. Effect of histamine
on the permeability of the ocular vessels // Arch Oph­
thalmol. — 1965. — Vol. 73.—P. 211—217.

85. Ashton N., Smith R. Anatomical study of
Schlemm's canal and aqueous veins by means of Neo-
prene casts III Arterial relations of Schlemm's canal //
Br J Ophthalmol. — 1953.— Vol. 37. — P. 577—583.

86. Aster J.C., Brewer G., Maisel H. The 4. Mike
proteins of the bovine lens: Spectrin-binding proteins
closely related in structure to red blood cell protein 4.1
// J Cell Biol. — 1986. — Vol. 103. — P. 115—122.

87. Aurell G., Holmgren H. Uber das Vorkummen
von elastischen Fasern in der Hornhaut des Auges //
Z Zellforsch Mikrosk Anat. — 1941. — Vol. 50.—
p. 446—453.

8>8.Ayajiki K-, Kindermann M., Hecker M. Intracel-lular pH and tyrosine phosphorylation but not calci­um determine shear stress-induced nitric oxide produc­tion in native endothelial cells // Circ Res. — 1996. — Vol. 78. — P. 750—758.

&9.Ayard S., Weiss J. B. A new look et vitreous humour collagen // Biochem J— 1984.— Vol. 218. — P. 835—840.

90. Baasti S., Mathur U. Unusual intermediate-term
outcome in three cases of limbal autograft transplantation
// Ophthalmology. — 1999. — Vol. 106. — P. 958—963.

91. Bacin F., Kantelip В., Menerath J. M. Barrieres
hemato-oculaires Physiologie. Encicl. Ved. Chir. (Paris-
France), Ophtalmologie, 21020 D 20, 3—1988, 6 p.

92. Balazs E. A., Toth L.Z., Ozanics V. Cytological
studies on the developing vitreous as related to the
hyaloid vessel system // Graefes Arch Klin Exp Ophthal­
mol.—1980. -Vol. 213.— P. 71—78.

93. Banerjee R., Lund R. D. A role for microglia in
the maintenance of photoreceptors in retinal transplants
lacking pigment epithelium // J Neurocytol. — 1992. —
Vol. 21. —P. 235—243.

94. Barak M.H., Weinreb R. N., Ryder M.I. Quan­
titative assessment of cynomolgus monkey trabecular
cell phagocytosis and adsorption // Curr Eye Res. —
1988.— Vol. 7.— P. 445—452.

95. Barany E.H., Berrie C. P., Birdsall. N.J.M.
The binding properties of the muscarinic receptors of the
cynomolgus monkey ciliary body and the response to
the induction of agonist subsensitivity // Br J Pharma­
col. — 1982. — Vol. 77. —P. 731—738.

96. Bassnett S. Coincident loss of mitochondria and
nuclei during lens fiber differentiation // Dev Dyn. —
1992. —Vol. 194.— P. 85—92.

97. Bassnett S. Mitochondrial dynamics in differenti­
ating fiber cells of the mammalian lens // Curr Eye
Res. — 1992.—Vol. 11. — P. 1227—1234.

98. Baud С A., Balvoine C. The intimate structu­
re of Descemet's membrane and its pathological deri­
vatives // Br. J Ophthalmol.—1953.— Vol.  126. —
P. 290—295.

§9.Baycott B.B., Hopkins J. M. Microglia in the retina of monkey and other mammals its distinction from other types of glia and horizontal cells // Neurosci. — 1981. —Vol. 6.— P. 679—688.

100. Beck R.W., Savino P.J., Repka M.X. Optic disc structure in anterior ischemic optic neuropathy // Ophthalmology. — 1984.— Vol. 91 — P. 1334—1340.

 

101. Beckers H. J. M., Klooster J., Vrensen G. F. J. M.
Ultrastructural identification of trigeminal nerve endings
in the rat cornea and iris // Invest Ophthalmol Vis
Sci. — 1992. —Vol. 33.— P. 1979—1985.

102. Bednarski A. De l'excavation physiologique du
nerf optique // Arch Ophthalmol. — 1925. — Vol. 42. —
P. 5—11.

103. Behr C. Beitrag zur Anatomie und Klinik des
septalen Gewebes und des Arterieneinbaus im Sehner-
venstamm // A von Graefes Arch Ophthalmol. —
1935.—Vol. 134.— P. 227—234.

104. Bembridge B.A., Crawford G.N.C., Pirie A.
Phase-contrast microscopy of the animal vitreous // Br
J Ophthalmol. — 1952.—Vol. 36. — P. 131 — 138.

105. Ben Sira I., Riva С. Е. Fluorescein diffusion in
the human optic dis // Invest Ophthalmol.— 1975.—
Vol. 14.—P. 205—211.

106. Benedetti E. L., Dunia /., Bentzel C.J. A port­
rait of plasma membrane specializations in eye lens
epithelium and fibers // Biochim Biophys Acta. —
1976.—Vol. 457.— P. 353—360.

107. Benedetti E. L, Dunia I., Ramaekers F.C.S.
Lenticular plasma membranes and cytoskeleton in Mo­
lecular and Cellular Biology of the Eye Lens / Ed.
H. Bloemendal, John Wiley and Sons. — New York,
1981, —P. 137—142.

108. Berger E. Beitrage zur anatomie der zonula zi-
nii. A von // Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol. —
1882.— Vol. 28.— P. 28—35.

109. Berman E. R. Biochemistry of the Eye. — New
York: Plenum Press, 1991.—492 p.

110. Bignami A., Dahl D. The radial glia of Muller in
the rat reina and their responce to injury // Exp Eye
Res. — 1979. — Vol. 28. — № 1. — P. 63—69.

111. Bill A. A method to determine osmotically effec­
tive albumin and gammaglobulin concentrations in tis­
sue fluids its application to the uvea and a note on the
effects of capillary «leaks» on tissue fluid dynamics //
Acta Physiol. — 1968. — Vol. 6. — P. 238—247.

112. Bill A. Aspects of physiological and pharmalog-
ical regulation of uveal blood flow // Acta Soc Med
Upsalien. — 1962. —Vol. 67. — P. 122—128.

113. Bill A. Autonomic nervous control of uveal
blood flow // Acta Physiol Scand.—1962. —Vol. 56.—
P. 70—76.

114. Bill A. Blood circulation and fluid dynamics in
the eye //Physiol Rev.— 1975. —Vol. 55. —P. 383—390.

115. Bill A., Svedbergh B. Scanning electron micro­
scopic studies of the trabecular meshwork and the canal
of Schlemm. An attempt to localize the main resistance
to outflow of aqueous humor in man // Acta Ophthal­
mol. — 1972. — Vol. 50. — P. 295—302.

116. Bill A. The 1990 Endre Balazs Lecture: Effects
of some neuropeptides on the uvea // Exp Eye Res. —
1991. —Vol. 53.— P. 3—11.

117. Bill A. The drainage of aqueous humor // Invest
Ophthalmol. — 1975. —Vol. 14.— P. 1—9.

118. Bill A., Barany E.H. Gross facility, facility of
conventional routes, and pseudofacility of aqueous hu­
mor outflow in the cynomolgus monkey // Arch Oph­
thalmol. — 1966. — Vol. 75.— P. 665—672.

119. Bill A., hinder J. Sympathetic control of cereb­
ral blood flow in acute arterial hypertension // Acta
Physiol Scand. — 1976. —Vol. 96. — P. 114—123.

120. Bill A., Tornqvist P., Aim A. Permeability of
the intraocular blood vessels // Trans Ophthalmol Soc
UK. — 1980.—Vol. 100.— P. 332—340.

121. Bird A. C. Bruch's membrane changes with age
// Br J Ophthal. — 1992. Vol. 76. — P. 160—168.

122. Birk D. E., Trelstad R. L. Extracellular compart­
ments in matrix morphogenesis Collagen fibril, bundle,

326

Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА

 

lamellar formation by corneal fibroblasts // J Cell Biol. — 1984. — Vol. 99. — P. 2024—2032.

123. Bishop P. N. Identification in vitreous and mo­
lecular cloning of opticin, a novel member of the fa­
mily of leucine-rich repeat proteins of the extracellu­
lar matrix // J Biol Chem. — 2000. — Vol. 275.—
P. 2123—2129.

124. Bishop P. N. Structural macromolecules and
supramolecular organisation of the vitreous gel // Prog
Ret Eye Res. — 2000. — Vol. 19.— P. 323—344.

125. Blakemore W. F. Microglial reaction following
thermal necrosis of the rat cortex An electron micro­
scope study // Acta Neuropathol. — 1972. — Vol. 21. —
P. 11 — 19.

126. Blanks J. C. Morphology of the retina // In
Ryan S. J., Ogden T. E. (eds) Retina St. Louis, CV
Mosby, 1989.— Vol. 1, —P. 37—52.

127. Blatt H. L. Endothelial cell density in relation to
morphology // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1979.—
Vol. 18.— P. 856—859.

\28.Btatt H.L., Rao G.N., Aquavella J. V. Endo­thelial cell density in relation to morphology // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1979. — Vol. 18. — P. 856—859.

129. Blazynski C, Perez M.T.R. Neuroregulatory
functions of adenosine in the retina // Prog Ret Res. —
1991, —Vol. 11. —P. 293—332.

130. Boeke J. Innervationsstudien III Die Nerven-
versorgung des ciliaris und des sphincter iridis bei Sau-
gern und Vogeln // Z microsk-anat Forsch. — 1933. —
Vol. 33. — P. 233—240.

131. Boothe R. C, Dobson V., Teller D. Y. Postnatal
development of vision in human and nonhuman primates
// Anna Rev Neurosci. — 1985. — Vol. 8. — P. 495—
502.

132. Borcherding M.S., Blacik L.J., Sit tig R. A.
Proteoglycans and collagen fibre organization in hu­
man corneoscleral tissue // Exp Eye Res. — 1975. —
Vol. 21. —P. 59—64.

133. Bos K.J., Holmes D.F., Meadows R.S., Kad-
ler К. Е., McLeod D., Bishop P. N. Collagen fibril orga­
nisation in mammalian vitreous by freeze etchrotary
shadowing electron microscopy // Micron. — 2001.—
Vol. 32.— P. 301—306.

134. Boulton M. E. Ageing of the retinal pigment
epithelium // In: Osborne N. N., Chader G. J. (eds.)
Progress in retinal research. — Oxford: Pergamon Press,
1991. —Vol. 11. —P. 125—151.

135. Boulton M. E., McKechnie N. M., Breda /., Bay­
ly M., Marshall J. The formation  of autofluorescent
granules in cultured human RPE // Invest Ophthalmol
Vis Sci. — 1989. — Vol. 30. — P. 82—89.

136. Bourne W. M., Nelson L. R., Hodge D. O. Cent­
ral corneal endothelial changes over a ten year period
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1997. — Vol. 38.—
P. 779—782.

137. Boycott В. В., Kolb H. The connections between
bipolar cells and photoreceptors in the retina of the
domestic cat // J Comp Neurol. — 1973. — Vol. 148. —
P. 91—98.

138. Boycott В. В., Wessle H. Morphological classifi­
cation of bipolar cells of the primate retina // Eur J
Neurosci. — 1991, — Vol. 3. — P. 1069—1088.

139. Braun A., Ehinger F., Sundler K- Neuropep-
tide Y immunoreactive neurons in the guinea pig uvea
and retina // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1984. —
Vol. 25.— P. 1113—1123.

140. Bredt D.S., Snyder S.H. Nitric oxide: a phy­
siologic messenger molecule // Ann Rev Biochem. —
1994.—Vol. 63.— P. 175—195.

141. Bregman B. S. Spinal cord transplants permit
the growth of serotoninergic axons across the site of

neonatal spinal cord transection // Dev Brain Res. — 1987.— Vol. 34.— P. 265—279.

142. Brenneisen P., Gogo I., Bayreuther K. Regula­
tion of DNA synthesis in mitotic and postmitotic WI38
fibroblasts in the fibroblast stem cell system // J Cell
Biochem.—1993.— Vol. 17.— P. 152—159.

143. Bright man M. W. The distribution within the
brain of Ferritin injected into cerebrospinal fluid com­
partments. II. Parenchymal distribution // Am J Anat.—
1965.— Vol. 117.— P. 193—200.

144. Brini A., Porte A., Stoeckel M.E. Morpho-
logie et structure du vitre adulte // In: Biologie et
Chirurgie du Corps Vitre / Eds. A. Brini, A. Bronner,
J. P. Gerhard, J. Nordmann. — Paul Masson, Paris,
1968.— P. 1.

145. Brittis P. A., Silver J. Multiple factors govern
intraretinal axon guidance a time lapse study // Mol Cell
Neurosci. — 1995. — Vol. 6. — P. 413—432.

146. Broekhuyse R.M., Kuhlmann E. D. Lipids in
tissues of the eye. VI. Sphingomyelins and cholesterol
esters in human sclera // Exp Eye Res.— 1972.—
Vol. 14.— P. 111 — 120.

147. Broekhyse R. M. The lipid composition of ag­
ing sclera and cornea // Ophthalmologica.— 1975.—
Vol. 171, —P. 82—90.

148. Brolin S. E., Diderholm H., Hammar H. An
autoradiographic study on cell migration in the eye lens
epithelium // Acta Soc Med Ups. — 1961. — Vol. 66. —
P. 43—51.

149. Bron А. В., Tripathi R. C. Anterior corneal
mosaic. Further observations // Br J Ophthalmol. —
1969. — Vol. 53. — P. 760—764.

150. Bron A. J. Anterior corneal mosaic // Br J Oph­
thalmol. — 1968. — Vol. 52. — P. 659—669.

151. Bron A. J. Photography of corneal pattern //
Arch Ophthalmol. — 1968.—Vol. 79. — P. 119—120.

152. Bron A. J. Vortex patterns of the corneal epithe­
lium//Trans Ophthalmol Soc UK.—1973. —Vol. 93.—
P. 455—463.

153. Bron A. J., Tripathi R. C. Anterior corneal mosa­
ic. Further observations // Br J Ophthalmol. — 1969. —
Vol. 53. — P. 760—768.

154. Bron A. /., Tripathi R. C, Tripathi B. J. Wolff's
anatomy of the eye and orbit / 8th ed. — London: Chap­
man and Hall Medical, 1997.— 736 p.

155. Brown G.C., Shields J. A. Cilioretinal arteries
and retinal arterial occlusion // Arch Ophthalmol. —
1979.—Vol. 97.— P. 84—92.

156. Brown H.G., Ireland M., Kuszak J. R. Ultra-
structural, biochemical and immunological evidence of
receptor-mediated endocytosis in the crystalline lens
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1990. — Vol. 31,—
P. 2579—2585.

157. Brown N. A. P., Bron A. J. Lens Disorders. But-
terworths, London, Washington, 1996.

158. Brown N. The change in shape and internal
form of the lens of the eye on accommodation // Exp
Eye Res. — 1973.— Vol. 15.— P. 441—450.

159. Bruckner R. Methods of protracted research
on the aging of eyes // Ophthalmologica.— 1959.—
Vol. 138.— P. 59—66.

160. Bryson J. M., Wolter J. R., O'Keefe N. T. Gangli­
on cells in the human ciliary body // Arch Ophthal­
mol. — 1966. — Vol. 75. — P. 57—65.

161. Buller C, Johnson D. Segmental variability of
the trabecular meshwork in normal and glaucomatous
eyes // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1994. — Vol. 35. —
P. 3841—3851.

162. Burd H. /., Judge S. /., Flavell M. J. Mechanics
of accommodation of the human eye // Vision Res. —
1999.— Vol. 39. — №9. — P. 1591-1595.

Литература

327

 

163. Burstein N.L., Maurice D. M. Cryofixation of
tissue surfaces by a propane jet for electron microscopy
//Micron. — 1978.— Vol. 9.— P. 191—201.

164. Busacca A. Elements de Gonioscopie Normale,
Pathologiqueet Experimentale. — San Paulo, Brazil:
Typografia Rossolillo, 1945.

165. Buschmann W., Llnnert £>., Hofmann W. The
tensile strenght of human zonule and its alteration with
age // A von Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol. —
1978.— Vol. 206.— P. 183—191.

166. Bussow H. The astrocytes in the retina and
optic nerve head of mammals //Cell and Tissue Res. —
1980. - Vol. 206. — № 3. — P. 367—378.

167. Butler J.M., Ruskell G. L, Cole D.F. Effects
of VIHh (facial) nerve degeneration on vasoactive intes­
tinal polypeptide and substance P levels in ocular and
orbital tissues of the rabbit // Exp Eye Res. — 1984. —
Vol. 39.— P. 523—531.

168. Butler T. L., McMenamin P.G. Resident and
infiltrating immune cells in the uveal tract in the early
and late stages of experimental autoimmune uveoretini-
tis // Invest Ophthalmol Vis Sci, — 1996. —Vol. 37. —
P. 2195—2210.

169. Cailliau P., Sung Nathans J., Adler R. Apopto-
tic photoreceptor cell death in mouse models of retini-
tis pigmentosa // Proc Natl Acad Sci USA. — 1994. —
Vol. 91. —P. 974—978.

170. Cajal S. R. Traumatic degeneration and re­
generation of the optic nerve and retina // In: May R.
ed. Degeneration and regeneration of the nervous
system. — New York: Hafner, 1928.— Vol. 2.—
P. 583—596.

171. Calkins D. J., Tsukamoto Y., Sterling P. Micro-
circuitry and mosaic of a blue-yellow ganglion cell in
the primate retina // J Neurosci. — 1998. — Vol. 18. —
№9. -P. 3373—3385.

172. Calkins D.J., Tsukamot Y., Sterling P. Foveal
cones form basal as well as invaginating junctions
with diffuse ON bipolar cells // Vision Res. — 1996. —
Vol. 36.-P. 3373—3381.

173. Campbell D.G., Simmons R. J., Grant M. W.
Chost cells as a cause of glaucoma // Am J Ophthal­
mol. — 1976. — Vol. 81. — P. 441—453.

174. Campbell F.W., Robson J.G., Westheimer С
Fluctuations in accommodation under steady viewing
conditions // J Physiol (Lond). — 1959.—Vol. 145. —
P. 579—585.

175. Campisi J. The biology of replicative senescence
// Eur J Cancer. — 1997. — Vol. 33 — P. 703—710.

176. Canning D. R., Hoke A., Malemud C. J. A po­
tent inhibitor of neurite outgrowth that predominates in
the extracellular matrix of reactive astrocytes // Int J
Dev Neurosci. — 1996.— Vol. 14. — P. 153—175.

177. Carlson K. H., Bourne W.M., McLaren J. W.
Variations in human corneal endothelial cell morphology
and permeability to fluorescein with age // Exp Eye
Res. — 1988.— Vol. 47. — P. 27—41.

178. Caroni P., Schwab M. E. Two membrane
protein fractions from rat central myelin with inhibi­
tory properties for neurite growth and fibroblast
spreading // J Cell Biol. — 1988. — Vol. 106.—
P. 1281 — 1288.

179. Casini C, Rickman D.W., Brecha N. С All
amacrine cell population in the rabbit retina // J Comp
Neurol. — 1995. —Vol. 356. P. 132—142.

180. Castenholz A. The vascular system of the albi­
no rat iris and its suitability for vital microscopy and
experimental studies on microcirculation // Ophthalmol
Res. - 1971. — Vol. 2. — P. 358—365.

181. Castenholz A. Untersuchungen zur funktionel-
len Morphologic der Endstrombahn // In: Technik der

vitalmikroscopischen Beobachtung und Ergebrnsse ex-perimenteller Studies am Iriskreislaufder Albinoratte. — Franz Steiner, 1970.

182. Castro-Correira J. Studies on the innervation
of the uveal tract // Ophthalmologica.— 1967.—
Vol. 154. —P. 497—512.

183. Cenedella R. Cholesterol and cataracts // Surv.
Ophthal. — 1996. — Vol. 40, № 4. — P. 320—337.

184. Chaine G., Coscas G. Physiologie des vaisseaux
retiniens. Encicl. Ved. Chir. (Paris-France), Ophtalmolo-
gie, 21024 С 20, 11 — 1986, 6 p.

185. Chaitin M. H., Hall M. O. Defective ingestion of
rod outer segments by cultured dystrophic rat pigment
epithelial cells // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1983. —
Vol. 24.— P. 812—822.

186. Chan T.L., Grunert U. Horizontal cell con­
nections with short wavelength-sensitive cones in the
retina: a comparison between new world and old world
primates // J Comp Neurol. — 1998. — Vol. 393.—
P. 196—209.

187. Chang £., Harley С. В. Telomere length and
replicative aging in human vascular tissue // Proc Natl
Acad Sci. — 1995. — Vol. 92. — P. 11190—11194.

188. Chang S. W., Ни F. R. Changes in corneal auto-
fluorescence and corneal epithelial barrier function with
aging // Cornea. — 1993. — Vol. 12. — P. 493—499.

189. Chan-Ling T. Glial neuronal and vascular inter­
actions in the mammalian retina // Prog Ret Eye Res. —
1994.— Vol. 13.— P. 357—389.

190. Chapman G.B., Spelsberg W. W. The occur­
rence of myelinated and unmyelinated nerves in the iris
angle of man and rhesus monkey // Exp Eye Res. —
1963.—Vol. 2.— P. 130—138.

191. Chatterjee A., Shah S., Doyle S. J. Effect of age
on final refractive outcome for 2342 patients following
refractive keratectomy // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1996. — Vol. 37. — P. 857—865.

192. Chen D. F., Schneider G. E., Martinou J. C. Bcl-2
promotes regeneration of severed axons in mammalian
CNS // Nature. — 1997. — Vol. 385. — P. 434—439.

193. Cheng H., Cao Y., Olson L. Spinal cord re­
pair in adult paraplegic rats: partial restoration of
hind limb function // Science.— 1996.— Vol. 273.—
P. 510—513.

194. Chisholm I. A., Grierson I. Particulate phagocy­
tosis by trabecular meshwork endothelium // Can J
Ophthalmol.—1977.—Vol. 12.— P. 293—302.

195. Cintron C, Covington H. I. Proteoglycan dis­
tribution in developing rabbit cornea // J Histochem
Cytochem. — 1990. — Vol. 38. — P. 675—682.

196. Clark V.M. The cell biology of the retinal pig­
ment epithelium // In Adler R., Farber D. (eds): The
Retina-A Model for Cell Biology, Part II. — Orlando FL
Academic Press, 1986. — P. 129—168.

197. Clowry G., Katarzyna S., Vrbova G. Trans­
plants of embryonic motoneurones to adult spinal cord:
survival and innervation abilities // Trends Neurosci. —
1991. —Vol. 14.— P. 355—357.

198. Cogan D.G. Ophthalmic Manlations of Sys­
temic. Vascular Disease. — Vol III. Major Problems in
Internal Medicine. — W. B. Saunders London, 1974.—
P. 132—141.

199. Cogan D. G., Kuwabara T. Focal senile trans-
lucency of the sclera // Arch Ophthalmol. — 1959. —
Vol. 62.— P. 604—612.

200. Cogan D. G., Toussaint D., Kuwabara T. Reti­
nal vascular patterns Part IV. Diabetic retinopathy //
Arch Ophthalmol. — 1961. —Vol. 66. — P. 366—375.

201. Cohen A.I. The electron microscopy of the
normal human lens // Invest Ophthalmol. — 1965. —
Vol. 4.— P. 433—441.

328

Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА

 

202. Cohen A. I. Ultrastructural aspects of the human
optic nerve // Invest Ophthalmol. — 1967. — Vol. 6. —
p. 294—301.

203. Cohen A. I. The electron microscopy of the
normal human lens // Invest Ophthalmol.— 1965.—
Vol. 4. — P. 433.

204. Cole D. F. Ocular fluids // In: The Eye / 3rd
edition (ed. H. Davson). — New York: Academic Press,
1984.— P. 269—275.

205. Cole D. F. Secretion of the aqueous humour //
Exp Eye Res Suppl. — 1977. —Vol. 1. —P. 161 — 172.

206. Cole D. F., Monro P. A. G. The use of fluo-
rescein-labelled dextrans in investigation of 35. Kivi-
rikko K. I., Myllyla R. Biosynthesis of collagens // In:
Piez K. A., Reddi A. H. (eds): Extracellular Matrix Bio­
chemistry. — New York: Elsevier, 1984. — P.83—112.

207. Coleman D. J. On the hydraulic suspension
theory of accommodation // Trans Am Ophthalmol
Soc. — 1986. — Vol. 84. — P. 846—853.

208. Coleman D. J. Unified model for accommodative
mechanism // Am J Ophthalmol. — 1970. — Vol. 69. —
P. 1063—1075.

209. Coleman D. /., Lizzie F. L. In vivo choroidal
thickness measurement // Am J Ophthalmol. — 1979. —
Vol. 88. — P. 369—377.

210. Collier R. Experimental embolic ischemia of
the choroid // Arch Ophthalmol. — 1967. — Vol. 77. —
P. 683—691.

211. Connor Т., Roberts A., Sporn M. Correlation of
fibrosis and transforming growth factor-beta type 2 le­
vels in the eye // J Clin Invest. — 1989. — Vol. 83. —
P. 1661 — 1666.

212. Cordeiro M., Bhattacharya S., Schultz G. TGF-1,
-2 and -3 in vitro: biphasic effects on Tenon's fibroblast
contraction, proliferation and migration // Invest Oph­
thalmol Vis Sci. — 1999. — Vol. 40. — P. 1962—1974.

213. Cordeiro M., Constable P., Alexander R. The
effect of varying mitomycin-c treatment area in glauco­
ma filtration surgery in the rabbit // Invest Ophthalmol
Vis Sci. — 1997.— Vol. 38.— P. 1639—1646.

214. Cordeiro M., Gay J., Khaw P. Human anti-TGF-2
monoclonal antibody: a new anti-scarring agent for glau­
coma filtration surgery // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1999. — Vol. 40. — P. 2225—2234.

215. Cordeiro M., Reichel M., Gay J. TGF-1, -2 and
-3 in vivo: effects on normal and mitomycin-c modulated
conjunctival scarring // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1999.—Vol. 40.— P. 1975—1982.

216. Corson M. A., James N. L., Latta S. E. Phospho-
rylation of endothelial nitric oxide synthase in response
to fluid shear stress // Circ Res. — 1996. — Vol. 79. —
P. 984—991.

217. Cotsaleris G., Cheng S. Z., Dong G. Existence of
slow-cycling limbal epithelial basal cells that can be prefe­
rentially stimulated to proliferate: Implications on epithe­
lial stem cells // Cell.— 1989. —Vol. 57. —P. 201—209.

218. Critchlow M., Bland Y., Ashhurst D. The effect
of exogenous transforming growth factor-beta 2 on heal­
ing fractures in the rabbit // Bone. — 1995. —Vol. 16. —
P. 521—527.

219. Crooks J., Kolb H. Localization of GABA, gly-
cine, glutamate and tyrosine hydroxylase in the hu­
man retina // J Comp Neurol. — 1992.— Vol. 315.—
P. 287—295.

220. Cross H. E., Jensen A. D. Ocular manifestations
in the Marfan syndrome and homocystinuria // Am J
Ophthalmol. — 1973. — Vol. 75. — P. 405—419.

221. Cserhati P., Szel A., Rohlich P. Four cone types
characterized by anti-visual pigment antibodies in the
pigeon retina // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1989. —
Vol. 30. — P. 74—83.

 

222. Cunha-Vaz J. G., Shakib M., Ashton N. Studies
on the permeability of the blood-retinal barrier. I. On the
existence, development and site of a blood-retinal barrier
// Br J Ophthalmol. — 1966. — Vol. 50. — P. 441—449.

223. Curcio C.A., Allen K-A. Topography of gangli­
on cells in human retina // J Comp Neurol. — 1990. —
Vol. 300.— P. 5—11.

224. Curcio C. A., Hendrickson A. E. Organization
Topography. Current Concepts // In: Ophthalmology
(eds H.E.Kaufman, D.M.Albert, F. A. Jakobiec). —
W. B. Saunders Co, 1991.

225. Dacey D. M. Morphology of a small-field bistra-
tified ganglion cell type in the macaque and human reti­
na//Vis Neurosci.—1993.—Vol. 10. —P. 1081 — 1093.

226. Dacey D. M. Parallel Pathways for Spectral
Coding in Primate Retina // Annu Rev Neurosci. —
2000. — Vol. 23. — P. 743—775.

227. Dacey D. M. Physiology, morphology and spa­
tial densities of identified ganglion cell types in pri­
mate retina // Ciba Foundation Symposium. — 1994. —
Vol. 184.— P. 12—21.

228. Dacey D. M. The mosaic of midget ganglion
cells in the human retina // J Neurosci.— 1993. —
Vol. 13.— P. 5334—5343.

229. Dacey D. M., Lee В. В. The «blue-on» oppo­
nent pathway in primate retina originates from a distinct
bistratified ganglion cell type // Nature.— 1994.—
Vol. 367.— P. 731—742.

230. Dacey D. M., Lee В. В., Stafford D. K., Pokor-
ny J., Smith V. C. Horizontal cells of the primate reti­
na: cone specificity without spectral opponency // Sci­
ence. — 1996. — Vol. 271. — P. 656—659.

231. Dacey D. M., Petersen M. R. Dendritic field size
and morphology of midget and parasol ganglion cells
of the human retina // Proc Natl Acad Sci. — 1992. —
Vol. 89. — P. 9666—9675.

232. Daicker В., Guggenheim R., Cwyat L. Raster-
elektronenmikroskopische befunde an Netzhautinnen-
flachen II Hintere Glaskorperabhebung // A von Grae-
fes Arch Klin Exp Ophthalmol.— 1977.— Vol. 204.—
P. 19—25.

233. Danjo S., Friend J., Thoft R. A. Conjunctival
epithelium in healing of corneal epithelial wounds //
Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1987. — Vol. 28,-
P. 1445—1449.

234. Das A., Pansky В., Budd G. С Demonstration
of insulin-specific mRNA in cultured rat retinal glial cells
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1987. — Vol. 28.-
P. 1800—1811.

235. Das S. R., Bhardwaj N., Kjeldbye H., Gouras P.
Muller's cells of chicken retina synthesize 11-cis-retinol
// Biochem J. — 1992. — Vol. 285. — P. 907—916.

236. Davanger M. The suspensory apparatus of the
lens: The su