Артерии. Артерии не отличаются от артерий других локализаций и обладают средним мышечным слоем и адвентицией, содержащей коллагеновые и толстые эластические волокна (рис. 3.8.56). Мышечный слой от эндотелия отделен внутренней эластической мембраной. Волокна эластической мембраны переплетаются с волокнами базальной мембраны эндотелио-цитов [496, 959].
По мере уменьшения калибра артерии превращаются в артериолы. При этом исчезает сплошной мышечный слой стенки сосудов.
Сосуды и сосудистая оболочка глазного яблока
319
Рис. 3.8.56. Микроскопическое строение сосудов хорио-идеи:
а — артерия и вена хориоидеи крупного калибра (стенка артерии обладает толстым средним слоем и адвентицией); б, в — особенности ультраструктуры капиллярных сосудов хориоидеи (/—мембрана Бруха; 2 —эндотелиальная выстилка капилляра; 3 — ядро эндотелиальной клетки; 4 —дубликатура цитоплазмати-ческой мембраны с образованием «пор»)
Вены. Вены окружены периваскулярной оболочкой, вне которой располагается соединительная ткань. Просвет вен и венул выстлан эндотелием. Стенка содержит неравномерно распределенные гладкомышечные клетки в небольшом количестве. Диаметр самых больших вен равен 300 мкм, а самых маленьких, прека-пиллярных венул, — 10 мкм [154, 1028].
Капилляры. Капилляры хориокапиллярного слоя сосудистой оболочки имеют довольно большой просвет, позволяющий проходить нескольким эритроцитам. Выстланы они эндоте-лиальными клетками, снаружи которых лежат перициты (рис. 3.8.56, б, в). Количество перицитов на одну эндотелиальную клетку хориокапиллярного слоя довольно велико. Так, если в капиллярах сетчатки это соотношение равно 1:2, то в сосудистой оболочке— 1:6 [370, 708, 933]. Перицитов больше в фовеолярной области. Перициты относятся к сократительным клеткам и участвуют в регуляции кровоснабжения. Особенностью капилляров хориоидеи является то, что они фенестрированы, в результа-
те чего их стенка проходима для маленьких молекул, включая флюоросцеин и некоторые белки [ill, 1007]. Диаметр пор колеблется от 60 до 80 мкм. Закрыты они тонким слоем цитоплазмы, утолщенной в центральных участках (30 мкм). Фенестры располагаются в хориока-пиллярах со стороны, обращенной к мембране Бруха [496, 527] (рис. 3.8.57, в). Между эндо-телиальными клетками артериол выявляются типичные зоны замыкания.
Межклеточные контакты эндотелиальных клеток хориокапилляров особого типа. Близкие по строению контакты выявляются в синусоидах печени и венулах брыжейки [1208]. Выявляются неравномерно распределенные зоны замыкания и десмосомы, которые не полностью герметичны [875, 1028]. Между эндотелиальными клетками и перицитами существуют щелевые контакты [1028].
Иннервация сосудистой оболочки. Сосудистая оболочка иннервируется симпатическими и парасимпатическими волокнами, исходящими из ресничного, тройничного, крылонебного и верхнего шейного ганглиев (рис. 3.8.57). В глазное яблоко поступают они с ресничными нервами.
Рис. 3.8.57. Особенности вегетативной иннервации уве-ального тракта глаза:
/ — крылонебный ганглий; 2 —верхний шейный симпатический
ганглий; 3 — ресничный ганглий; 4 — тройничный ганглий; 5 —
пятый нерв
В строме сосудистой оболочки каждый нервный ствол содержит 50—100 аксонов, теряющих миелиновую оболочку при проникновении в нее, но сохраняющих шванновскую оболочку.
320
Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА
Постганглионарные волокна, исходящие из ресничного ганглия, остаются миелинизиро-ванными.
Сосуды надсосудистой пластинки и стромы сосудистой оболочки исключительно обильно снабжены как парасимпатическими, так и симпатическими нервными волокнами (рис. 3.8.58).
Рис. 3.8.58. Особенности распределения нервных волокон между сосудами сосудистой оболочки
Симпатические адренергические волокна, исходящие из шейных симпатических узлов, обладают сосудосуживающим действием.
Парасимпатическая иннервация сосудистой оболочки исходит от лицевого нерва (волокна, идущие из крылонебного ганглия), а также из глазодвигательного нерва (волокна, идущие из ресничного ганглия).
Последние исследования значительно расширили наши знания относительно особенностей иннервации сосудистой оболочки. У различных животных (крыса, кролик) и у человека артерии и артериолы сосудистой оболочки содержат большое количество нитрэргических и пептидэргических волокон, образующих густую сеть. Эти волокна приходят с лицевым нервом и проходят через крылонебный ганглий и не-миелинизированные парасимпатические ветви от ретроглазного сплетения [328, 1202]. У человека, кроме того, в строме сосудистой оболочки имеется особая сеть нитрэргических ган-глиозных клеток (положительны при выявлении НАДФ-диафоразы и нитроксидной синте-тазы), чьи нейроны связаны друг с другом и с периваскулярной сетью (рис. 3.8.59). Отмечено, что подобное сплетение определяется только у животных, имеющих фовеолу.
Ганглиозные клетки сконцентрированы в основном в височных и центральных областях сосудистой оболочки, по соседству с макуляр-ной областью. Общее количество ганглиозных клеток в сосудистой оболочке порядка 2000. Распределены они неравномерно. Наибольшее их количество обнаруживается с темпоральной
стороны и центрально. Клетки маленького диаметра (< 10 мкм) располагаются по периферии [328]. Диаметр ганглиозных клеток увеличивается с возрастом, возможно, из-за накопления в них липофусциновых гранул.
В нейронах выявлены нитрэргические трансмиттеры. Подобные нейротрансмиттеры обеспечивают расширение сосудов. Обнаруживаются они в периваскулярных нервах различных органов [116, 757, 787, 1081]. Этот медиатор вызывает также расслабление гладких мышц различных органов, например кишечника и трахеи [423], желчного пузыря [1059].
В некоторых органах типа сосудистой оболочки нитрэргические нейротрансмиттеры выявляются одновременно с пептидэргическими, также обладающими сосудорасширяющим действием [365, 614, 739, 1059]. Пептидэргичес-кие волокна [1118], вероятно, исходят из крылонебного ганглия и проходят в лицевом и большом каменистом нерве [1118]. Вероятно, что нитро- и пептидэргические нейротрансмиттеры обеспечивают вазодилятацию при стимуляции лицевого нерва.
Периваскулярное ганглиозное нервное сплетение расширяет сосуды сосудистой оболочки, возможно регулируя кровоток при изменении внутриартериального кровяного давления. Оно защищает сетчатку от повреждения тепловой энергией, выделяющейся при ее освещении. Flugel et al. [328] предложили, что ганглиозные клетки, расположенные у фовеолы, защищают от повреждающего действия света именно тот участок, где происходит наибольшая фокусировка света. Выявлено, что при освещении глаза существенно увеличивается кровоток в прилежащих к фовеоле участках сосудистой оболочки.
Рис. 3.8.59. Ганглиозная клетка сосудистой оболочки типичного строения, к которой подходит и контактирует нервное волокно:
/ — ганглиозная клетка; 2 —крупное ядрышко ганглиозной клетки; 3 — нервное волокно
Сосуды, и сосудистая оболочка глазного яблока
321
Особенности кровообращения в сосудистой оболочке. Особенности кровообращения уве-ального тракта изучались интенсивно на протяжении многих лет как в эксперименте, так и в клинике. В 1975 г. Bill [114] суммировал имеющиеся данные и привел свою концепцию физиологии хориоидеи.
У обезьян хориоидальный кровоток исключительно интенсивный, приблизительно в 20 раз выше, чем в сосудах сетчатой оболочки (радужка — 8 ± 1 мг/мл; ресничное тело — 81 ±6 мг/мл; сосудистая оболочка — 677 ± ±67 мг/мл; сетчатка — 34 ± 2 мг/мл). Поскольку интенсивность артериального кровотока столь высока, насыщенность кислородом венозной крови только на 3% ниже, чем насыщенность артериальной крови. И это несмотря на то, что кислород отдается наружной части сетчатой оболочки. Артериовенозные анастомозы играют небольшую роль в поддержании высокой насыщенности кислородом венозной крови. Предлагается, что высокий уровень увеаль-ного кровотока обеспечивает терморегуляцию внутриглазных оболочек, компенсируя снижение температуры в переднем отделе глаза и предотвращая перегревание сетчатки при ее освещении светом.
Регуляция кровотока. Механизмы регуляции кровотока в сетчатке и сосудистой оболочке существенно отличаются. Если в сетчатке преобладают механизмы ауторегуляции, то в хориоидее эти функции берут на себя симпатические нервные сплетения.
Интенсивность кровотока в сетчатке незначительно увеличивается при повышении концентрации рСО2 [347], а гипероксия вызывает небольшое сужение сосудов. При этом интенсивность кровотока снижается. Особенностью кровообращения сетчатки является и то, что на него не влияет изменение внутрисосудистого давления, что наблюдается, например, при изменении внутриглазного давления.
Кровообращение в хориоидее также усиливается при увеличении концентрации рСО2, но более значительно. При повышении парциального давления кислорода интенсивность кровотока практически не изменяется [112, 113].
Кровообращение хориоидеи не автономно, а регулируется нервными механизмами [248]. Ауторегуляция кровообращения выявлена только в сосудах ресничного тела и радужки. При стимуляции симпатической нервной системы наступает уменьшение просвета сосудов хориоидеи. При этом падает внутриглазное давление из-за уменьшения объема крови. Подобная реакция характерна для а-адренэргического типа иннервации [112, 113].
Сосуды хориоидеи находятся обычно в состоянии небольшого сокращения (сосудосуживающий тонус). Предполагают, что такое состояние защищает сетчатку от гиперперфузии сосудов, наблюдающейся при ряде заболеваний,
сопровождающихся повышением внутриартери-ального давления [119]. Вазомоторные терминалы заканчиваются в основном на артериолах и реже на артериях. Иннервируются также вены и венулы. Отсутствует иннервация хорио-капилляров [933]. На холинэргическую стимуляцию сосуды хориоидеи отвечают расширением просвета [1037].
В увеальном тракте выявлены также нит-ро- и пептидэргические волокна, обладающие сосудорасширяющим действием [933]. Подходят они к глазу по ходу лицевого нерва, образуя синапсы в крылонебном ганглии [328, 786, 1037, 1118].
Капилляры сосудистой оболочки и ресничных отростков напоминают таковые слизистой оболочки кишечника и почки. Исследование проницаемости этих капилляров выявило, что стенка пропускает большие молекулы. Дальнейшее продвижение молекул из сосудистой оболочки в сетчатку невозможно в результате наличия между пигментными клетками эпителия сетчатки плотных межклеточных контактов [222, 399, 1016]. Утечка белка из просвета капилляров сосудистой оболочки или ресничных отростков превышает подобную утечку в почках в пять раз, а в сердечной и скелетной мышцах в десять [120]. Благодаря такой высокой пропускной способности стенки сосудов, концентрация IgG в строме ресничных отростков и строме сосудистой оболочки составляет 60— 70% концентрации этого белка в плазме крови. Это свойство создает высокое осмотическое давление в ткани сосудистой оболочки (превышает давление сетчатки примерно на 15 мм ртутного столба). Разница в осмотическом давлении между сосудистой оболочкой и сетчаткой вызывает фильтрацию жидкости из сетчатки по направлению к сосудистой оболочке и является силой, которая придавливает сенсорную часть сетчатки к пигментному эпителию.
Наличие высокой проницаемости сосудов хориоидеи способствует транспорту в сетчатую оболочку витамина А, находящегося в макромо-лекулярном комплексе ретинол-связанного белка с преальбумином. Возможность выхода такой большой молекулы обеспечивается наличием фенестр. Высока пропускная способность сосудов и для низкомолекулярных веществ типа глюкозы. Причем она более чем в двадцать раз выше относительно сосудов мышцы сердца и в восемьдесят относительно сосудов скелетной мышцы. Это резко отличает сосуды хориоидеи от сосудов сетчатой оболочки.
Ишемия хориоидеи. На протяжении многих десятилетий непонятной оставалась причина развития ишемии хориоидеи при столь высокой насыщенности ее анастомозирующими сосудами. Причем участки ишемии хориоидеи строго очерчены [1198, 1199].
Механизмы развития локальной ишемии были непонятны и по следующим причинам:
322
Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА
1. 
Кровоток в капиллярах хориоидеи один из
самых интенсивных — 800—1200/100 гр/мин.
2. К хориоидее направляется 85% всего
объема крови, направленного к глазному ябло
ку (к сетчатке только 4%).
3. Кровь в посткапиллярных кровеносных
сосудах хориоидеи столь же богата кислоро
дом, как и артериальная кровь [117, 293, 828].
4. Кровообращение в сосудах хориоидеи не
ауторегулируется, поскольку насыщение кро
ви углекислым газом минимальное [114, 117,
1196].
5. Максимальная стимуляция симпатичес
кой нервной системы приводит к уменьшению
объема кровообращения только на 60% [114,
117, 1196]; стенка капиллярных сосудов не гер
метична и проницаема для различных веществ,
включая белки.
Таким образом, имеющиеся анатомические и физиологические сведения не позволяли исследователям объяснить механизмы развития ишемии хориоидеи. Тем не менее, участки ишемии, а также инфаркта хориоидеи, не столь уж и редкое явление [77, 333, 515].
Были проведены многочисленные экспериментальные исследования, сводившиеся к введению в кровяное русло микрочастиц шаровидной формы [80, 210, 464, 893, 1198, 1199] или флюоресцеина [77, 257, 460, 515, 1108]. Но и при этом, объяснения этому явлению найдено не было. Лишь использование флюоресцеина позволило наблюдать наполнение участков хо-риокапиллярных сосудов флюоросцеином в виде секторов. Последовательность и площадь наполнения сосудов кровью четко соответствовала строению «хориокапиллярной дольки». Долька начинала наполняться кровью с центральных участков и лишь спустя несколько секунд кровь поступала к периферии. Поскольку строение «дольки» в различных участках уве-ального тракта различно (см. выше), различна и скорость кровенаполнения хориоидеи в различных участках.
Количественные и качественные характеристики кровообращения в «дольках» зависят от многих причин и, в первую очередь, от внутриглазного давления [257]. Установлено также, что венозная кровь отводится от каждой «дольки» в отдельности. При этом кровь соседних «долек» не смешивается. По всей видимости, такая система кровообращения предопределяет существование наиболее быстрого и короткого пути оттока венозной крови из хориоидеи. С другой стороны, возникает вероятность в определенных условиях возникновения ишемии хориоидеи на границе «долек». Наиболее часто ишемия наступает при окклюзии коротких задних ресничных артерий, а также сосудов глазницы [460, 470].
Развитие ишемии хориоидеи неблагоприятно влияет на строение и функции сетчатой оболочки. Исчезают фоторецепторы наружного ядер-
ного слоя, наступает миграция клеток пигментного эпителия в сетчатку.
Таким образом, на основании приведенных данных видна несостоятельность концепции о невозможности развития ишемии хориоидеи из-за большого количества анастомозов между сосудами.
Возрастные изменения сосудистой оболочки. В сосудистой оболочке глаза с возрастом уменьшается количество эластической ткани [1049], а также уменьшается толщина и самой сосудистой оболочки [868]. Вокруг крупных сосудов формируется широкая прослойка волокнистой ткани. При этом сосуды хориоидеи начинают напоминать сосуды радужки. В дополнение к описанному склерозу сосудистой стенки изменяется также число и калибр сосудов. Приведенные структурные изменения сопровождаются уменьшением скорости наполнения хориокапиллярного слоя, что показано при помощи флюоресцентной ангиографии. Появляются пятна гипофлюоресценции, хотя общая интенсивность свечения сохраняется независимо от возраста [525].
Регенерация увеального тракта. После повреждения любого участка увеального тракта наступает лишь заместительная регенерация. В эту область первоначально мигрируют клетки соединительной ткани (фибробласты), которые синтезируют межклеточное вещество и коллаген, выполняющие дефект. Затем наступает организация волокнистой ткани с образованием соединительнотканного рубца. Рубец, как правило, довольно интенсивно пигментирован, поскольку в нем скапливаются зерна меланина, высвободившиеся из поврежденных стромаль-ных меланоцитов. Существуют определенные различия в скорости заместительной регенерации радужной оболочки. Это связано с тем, что после ее повреждения (радиальные разрывы) края раны расходятся. В таких случаях рубцевания вообще не происходит.
Литература
1. Абрамов В. Г. Болезнь трансплантата рого
вицы.— Ярославль: Верх.-Волж. кн. изд-во, 1972. —
215 с.
2. Абрамов В. Г. К вопросу об иннервации рогови
цы // Офтальмол. журн.— 1959. — №6. — С. 358—
362.
3. Артемов А. В. Изменение дренажной зоны гла
за и сосудов, осуществляющих ее трофику в возраст
ном аспекте // Офтальмол. журн. — 1980. — № 7.—
С. 401—405.
4. Артемов А. В. Сравнительная характеристика
состояния тканей дренажной зоны глаза, сосудов ра
дужки и цилиарного тела у больных системными сосу
дистыми заболеваниями и простой глаукомой // Тез.
докл. Междунар. конф. офтальмологов городов-побра
тимов Одессы. — Одесса, 1981, —С. 181-182.
5. Артемов А. В. Состояние дренажной зоны и со
судов переднего отдела глаза у больных атероскле
розом, гипертонической болезнью, сахарным диабетом
Литература
323
и открытоугольной глаукомой: Автореф. дис.... канд. мед. наук. — Одесса, 1982.— 20 с.
6. Беляев В. С. Склеропластика в лечении прогрес
сирующей миопии. — М.: Изд-во Ин-та дружбы наро
дов, 1977.— 229 с.
7. Боговягин В. Л., Франк Г. М. Субмикроскопичес
кая организация и функциональные особенности мюл-
леровских клеток сетчатки // Биофизика,— 1962.—
Т. 7. — № 1 — С. 42—50.
8. Вызов А. Л. Потенциалы в глиальных клетках
сетчатки // В кн.: Функции нейроглии.—Тбилиси:
Мецниереба, 1979. — С. 49—59.
9. Вит Ь. В., Дмитриев С. К- Гемофтальмический
барьер при травме глаза // Офтальм. журн. — 1997. —
№ 2.— С. 143.
10. Bum В. В., Мальцев Э.В. Особенности репара
ции повреждений эпителия роговицы и хрусталика у
животных, подвергшихся хроническому воздействию
малых доз ионизирующей радиации и интенсивному
световому облучению // Офтальм. журн. — 1998. —
№1. —С. 69—73.
М.Вит В. В., Мальцев Э. В., Павлюченко К-П. Влияние повышенной инсоляции и малых доз ионизирующей радиации на регенерацию эпителия хрусталика // Офтальм. журн. — 1997. — № 5. — С. 445—448.
12. Вит В. В., Юмашева А. А., Бабанина Ю. Д.
Послеоперационные осложнения циркляжа различ
ными материалами по данным экспериментальных
исследований // Офтальм. журн. — 1979. — № 4. —
С. 244—247.
13. Войно-Ясенецкий В. В., Думброва Н. Е. Ультра
структура многослойной волокнистой ткани, образую
щейся за десцеметовой оболочкой после ожога рого
вицы серной кислотой // Офтальм. журн.— 1971.—
№8.— С. 599—603.
14. Войно-Ясенецкий В. В. О природе и регенера-
ционных свойствах клеток стромы и эндотелия рого
вицы // В кн.: Материалы 3-й конференции по вопро
сам регенерации и клеточного размножения, 1962. —
С. 28-30.
15. Войно-Ясенецкий В. В. Патологический рост
эндотелия при экспериментальном ожоге роговицы
серной кислотой // Материалы научн. конф., посвя
щенной 90-летию со дня рождения В. П. Филатова,
Киев. 1965 —С. 19—20.
16. Войно-Ясенецкий В. В. Процесс приживления
роговичного трансплантата при внутричерепном по
вреждении тройничного нерва // Офтальм. журн. —
1959. — № 3. — С. 170—176.
17. Войно-Ясенецкий В. В. Метаплазия тканей гла
за при осложненном раневом процессе // В кн.: Усло
вия регенерации органов и тканей у животных. — М.,
1965 — С. 45—49.
18. Войно-Ясенецкий В. В. Разрастание и изменчи
вость тканей глаза при его заболеваниях и травмах. —
К.: Вища школа, 1979. — 224 с.
19. Калинина А. В. Глиальные клетки сетчатки ля
гушки Rana ridibunda Pall // Арх. анат., гист. и эмб-
риол. — 1983. — Т. 84. — № 4. — С. 33—38.
20. Кашинцева Л. Т. Глаукома у больных сахарным
диабетом // Автореф. дис.... д-ра мед. наук. — М.,
1972.— С. 30.
21. Красновид Т. А., Вит В. В. Повреждение и вос
становление функции клеток заднего эпителия роговой
оболочки после экстракции катаракты // Офтальмол.
журн. — 1995. — № 3. — С. 158
22. Мальцев Э. В. Хрусталик. — М.: Медицина,
1988.— С. 190.
23. Мальцев Э. В., Павлюченко К. П. Биологичес
кие особенности и заболевания хрусталика. — Одесса:
Астропринт, 2002. — 445 с.
24. Назаренко Н.И., Вит В. В., Бабанина Ю. Д.
Динамика морфологических изменений оболочек гла
за и прочности склеры после диатермокоагуляции //
Офтальм. журн. — 1981. — № 8. — С. 498—501.
25. Певзнер Л. 3. Биохимические особенности гли
альных клеток как основа для участия нейроглии в
специфической активности нейронов // В кн.: Функции
нейроглии. — Тбилиси: Мецниерба, 1979. — С. 251 —
265.
26. Певзнер Л. 3. Функциональная биохимия нейро
глии.—Л.: Наука, 1972.— 200 с.
27. Полунин Г. С, Макаров И., Шеремет Н. Осо
бенности клинического течения отдельных видов луче
вых катаракт // Вестн. офтальмол. — 1998. — № 5. —
С. 32—35.
28. Пучкшська Н. О. До питания про морфолопю
Hepeie i нервових закшчень poroeoi оболонки // Ме-
дичн. журн. — 1947. — № 16. — С. 340—356.
29. Пучывська Н. О. Морфолопчш особливост1 нер-
bjb ештелш роговоТ оболонки // В кн.: 36., присвяч.
Пям'ят1 О. В. Леонтовича (1869—1943). — К., 1948. —
С. 142—149.
30. Пучковская Н. А., Войно-Ясенецкий В. В. Вто
ричные дистрофические и структурные изменения
в переднем отделе глаза. — М.: Медицина, 1985.—
С. 192.
31. Розенфельд И. А. Флюорометрия в офтальмоло
гии. Обзор литературы // МРЖ. Офтальмология. —
1987. — № 4. —Т. 448.— С. 25—30.
32. Судакевич Д. И. Архитектоника системы внут
риглазного кровоснабжения. — М.: Медицина, 1971. —
С. 111.
33. Тринчук В. В., Мальцев Э. В., Расина Д. Г.,
Бормусова Э. А. Гистологическая и гистохимическая
характеристика ожогов роговицы различной степени
тяжести // Тез. докл. 1-го укр. съезда анатомов, гис
тологов и топографоанатомов.—Винница, 1980.—
С. 127—128.
34. Тринчук В. В., Мальцев Э. В., Расина Д. Г.,
Бормусова Э. А. Диэлектрические и патогистологичес-
кие параллели моделированных имических ожогов ро
говой оболочки глаза // Офтальмол. журн. — 1985. —
№2.— С. 115—118.
35. Федоров С. #., Егорова Э. В. Хирургическое
лечение травматических катаракт с интраокулярной
коррекцией. — М.: Медицина, 1985. — 327 с.
36. Федоров С.Н., Ронкина Т. И., Явишева Т. М.
Эндотелий роговицы человека.—М., 1993. — С. 126.
37. Шибкова С. А. О ганглиозных клетках сетчатки
лягушки // Арх. анатомии, гистологии и эмбриоло
гии. — 1 970. — Т. 9. — № 11. — С. 72—77.
38. Шибкова С. А. О ганглиозных клетках сетчат
ки селахий // Арх. анатомии, гистологии и эмбриоло
гии. — 1971. — Т. 60. — №3. — С. 21—28.
39. Школьник-Яррос Е. Г., Калинина А. В. Нейро
ны сетчатки. — М.: Наука, 1986. — 205 с.
AO.Acharya S., Rodriguez /., Moreira Т. SPACR a novel interphotoreceptor matrix glycoprotein in human retina that interacts with hyaluronan // J Biol Chem. — 1998.— Vol. 273.— P. 31599—31606.
41. Acott T.S., Samples J. R., Bradley J. M. Trabe-
cular re-population by anterior trabecular meshwork
cells after laser trabeculoplasty // Am J Ophthalmol. —
1989.— Vol. 1. —P. 107—112.
42. Adler A. J., Martin K. /. Retinol-bilding in bovine
interphotoreceptor matrix // Biochem Biophys Res Com-
mun—1982.— Vol. 108.— P. 1601 — 1608.
AZ.Ahnelt P.K., Keri C, Kolb H. Identification of pedicles of putative blue sensitive cones in human and primate retina // J Comp Neurol. — 1990. —Vol. 293 — P. 39—53.
324
Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА
44. 
Ahnelt P. К., Kolb И., Pflug R. Identification of
a.subtype of cone photoreceptor likely to be blue sensi
tive in the human retina // J Camp Neurol— 1987. —
Vol. 255 (18).— P. 34—40.
45. Ahnelt P., Kolb H. Horizontal cells and cone
photoreceptors in human retina: A Golgi-electron micro
scopic study of spectral connectivity // J Compar Neu
rology. — 1994. — Vol. 343. — P. 406—427.
46. Ahnelt P., Kolb H. Horizontal cells and cone
photoreceptors in primate retina: A Golgi-light micro
scope study of spectral connectivety // J Comp Neu
rol — 1994. — Vol. 343. — P. 387—405.
M.Aitken D., Friend J., Thoft R. A. Corneal re-epi-thelialization from the conjunctiva // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1988. — Vol. 29. — P. 224—231.
48. Aizawa K. The depth of the normal anterior
chamber // Acta Soc Ophthalmol.—1958. —Vol. 62.—
P. 2283—2289.
49. Al-Aswad L., Adorante J.S., Erickson К. E. Ef
fects of cell volume regulators on outflow facility in calf
and human eyes in vitro (Abstract) // Invest Ophthal
mol Vis Sci. — 1995. — Vol. 36. — P. 3331—3338.
50. Albona /., Purslowb P.P., Karwatowskic W.S.S.,
Eastyd D. L. Age related compliance of the lamina cri-
brosa in human eyes // Br J Ophthalmol. — 2000. —
Vol. 84.— P. 318—323.
51. Albona J. An investigation into the age-related
changes in the extracellular matrix of the human lamina
cribrosa // PhD thesis. — Bristol: University of Bristol.,
1995.
52. Alcala I., Maisel H. Biochemistry of lens plasma
membranes and cytoskeleton // In The Ocular Lens:
Structure, Function and Pathology / Ed. H. Maisel, Mar
cel Dekker. — New York, 1985. — 169 p.
53. Allansmith M. R., Kajiyama G., Abelson M. B.
Plasma cell content of main and accessory lacrimal
glands and conjunctiva // Am J Ophthalmol. — 1976. —
Vol. 82 —P. 819—825.
54. Allen D.P., Low P.S., Dola A. Band 3 and an-
kyrin homologues are present in the eye lens: Evidence
for all major erythrocyte membrane components in same
non-erythroid cell // Biochem Biophys Res Commun. —
1987.—Vol. 149—P. 266—273.
bb.Allsopp R.C., Vaziri #., Patterson C, Gold stein S., Younglai E. V., Futcher A. B. Telomere length predicts replicative capacity of human fibroblasts // Proc Natl Acad Sci. — 1992. — Vol. 89. — P. 10114—10118.
56. Almegard В., Andersson S. E. Outflow facility
in the monkey eye: Effects of calcitonin gene-relat
ed peptide, cholecystokinin, galanin, substance P and
capsaicin // Exp Eye Res. — 1990. — Vol. 51 —
P. 685—692.
57. Alvarado J. A., Van Horn С Muscle cell types of
the cat inferior oblique // In Lennerstrand G., Bach-y-
Rita P. (eds): Basic Mechanisms of Ocular Motility. —
Oxford Pergamon Press, 1975. — P. 15—45.
58. Alvarado J. A., Yun A.]., Murphy C.G. Juxta-
canalicular tissue in primary open angle glaucoma and
in nonglaucomatous normals // Arch Ophthalmol. —
1986.— Vol. 104.— P. 1517—1525.
59. Alvarado /., Murphy C, luster R. Age-related
changes in the basement membrane of the human cor
neal epithelium // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1983.—
Vol. 24.— P. 1015—1021.
60. Alvarado /., Murphy C, luster R. Trabecular
meshwork cellularity in primary open angle glaucoma
and nonglaucomatous normals // Ophthalmology. —
1984.—Vol. 91. —P. 564—572.
61. Alvarado /., Murphy C, Polansky J. Age-related
changes in trabecular meshwork cellularity // Invest
Ophthalmol Vis Sci. — 1981. — Vol. 21. — P. 714—721.
62. Amalric P. Choroidal vessel occlusive syndromes
clinical aspects // Trans Am Acad Ophthalmol Otolaryn-
gol. — 1973. — Vol. 77. — P. 291—299.
63. Amalric P. Le territoire chorio-retinien de l'artere
ciliaire longue posterieure. Etude clinique // Bull Soc
Ophtalmol Fr. — 1963. — Vol. 63. — P. 342—350.
64. Ambati /., Canakis C.S., Miller G. V., Gragou-
das E. S. Diffusion of high molecular weight compounds
through sclera // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 2000. —
Vol. 41. —P. 1181 — 1185.
65. Anderson D. R. Scanning electron microscopy of
primate trabecular meshwork // Am J Ophthalol. —
1969.— Vol. 71. —P. 90—98.
66. Anderson D. R. Ultrastructure of human and
monkey lamina cribrosa and optic nerve head // Arch
Ophthalmol. — 1969. — Vol. 82. — P. 800—807.
67. Anderson D. R. Ultrastructure of the optic ner
ve head // Arch Ophthalmol. — 1970. — Vol. 83.-
P. 63—68.
68. Anderson D. R., Braverman S. Re-evaluation of
the optic disc vasculature // Am J Ophthalmol. —
1976.— Vol. 82.— P. 165—172.
69. Anderson D. R., Hoyt W.F. Ultrastructure of
intraorbital portion of human and monkey optic nerve //
Arch Ophthalmol. — 1969.— Vol. 82. — P. 506—511.
70. Anderson D. R., Hoyt W.F., Hogan M. J. The
fine structure of the astroglia in the human optic nerve
and optic nerve head // Trans Am Ophthalmol Soc. —
1969.—Vol. 65.— P. 275—282.
7'1. Anderson D. R., Trobe J.D., Hood T. W. Optic tract ingury after anterior temporal lobectomy // Ophthalmology. — 1989. — Vol. 96. — P. 1065—1070.
72. Anderson S., Sundar Raj S., Fife D., Wessel H.,
Sundar Raj N. Developmentally regulated appearance
of spliced variants of type XII collagen in the cornea
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 2000. — Vol. 41.-
P. 55—63.
73. Andley U., Hebert /., Morrison A. et al. Modu
lation of lens epithelial cells proloferation by enhan
ced prostaglandin synthesis after UVB exposure // In
vest Opthalmol Vis Sci. — 1994. — Vol. 35, № 2.-
P. 375—381.
74. Andres К. Н. Morphological criteria for the differ
entiation of mechanoreceptors in vertebrates // In: Sym
posium Mechanorezeption Abhdlg Rhein Westf Akad
Wiss / Ed. J. Schwartzkopff, Westdeutscher Verlag, Op-
laden, 1974.— Vol. 53.— P. 135—141.
75. Anthony T. L, Pierce K. L., Stamer W. D., Re
gan J. W. Prostaglandin F2 alpha receptors in the hu
man trabecular meshwork // Invest Ophthalmol Vis
Sci.— 1998.— Vol. 38.— P. 1222—1228.
76. Araki M. Observations on the corrosion casts of
the choriocapillaris at the posterior pole // Acta Soc
Ophthalmol Jpn. — 1977. — Vol. 80. — P. 315—322.
77. Archer D., Krill A., Newell F. Fluorescein studies
of normal choroidal circulation // Am J Ophthalmol. —
1977.— Vol. 69.— P. 543.
78. Archer S. Molecular biology of visual pigments //
In «Neurobiology and Clinicak Aspects of the Outer
Retins / Eds. M. B. A. Djamgoz, S. N. Archer, S. Valler-
ga. — Chapman and Hall London, 1995.— P. 79—104.
79. Arentsen J. /., Rodrigues M. M., Laitsson P. R.
Histopathology of 150 trabeculectomy specimens in
glaucoma //Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1995.—
Vol. 16.— P. 32—38.
80. Ashton N. Anatomical study of Schlemm's canal
and aqueous veins by means of Neoprene casts II Aque
ous veins // Br J Ophthalmol. — 1952.—Vol. 36.—
P. 265—273.
81. Ashton N. Anatomical study of Schlemm's canal
and aqueous veins by means of Neoprene casts I Aque-
Литература
325
ous veins // Br J Ophthalmol. -1951. —Vol. 35.— P. 291-299.
82. Ashton N. Observations on the choroidal cir
culation // Br J Ophthalmol. — 1961.—Vol. 54.—
P. 1084—1091.
83. Ashton N., Brini A., Smith R. Anatomical studies
of the trabecular meshwork of the normal human eye //
Br J Ophthalmol. — 1956. Vol. 40. — P. 257—262.
84. Ashton N., Cunha-Vaz J. G. Effect of histamine
on the permeability of the ocular vessels // Arch Oph
thalmol. — 1965. — Vol. 73.—P. 211—217.
85. Ashton N., Smith R. Anatomical study of
Schlemm's canal and aqueous veins by means of Neo-
prene casts III Arterial relations of Schlemm's canal //
Br J Ophthalmol. — 1953.— Vol. 37. — P. 577—583.
86. Aster J.C., Brewer G., Maisel H. The 4. Mike
proteins of the bovine lens: Spectrin-binding proteins
closely related in structure to red blood cell protein 4.1
// J Cell Biol. — 1986. — Vol. 103. — P. 115—122.
87. Aurell G., Holmgren H. Uber das Vorkummen
von elastischen Fasern in der Hornhaut des Auges //
Z Zellforsch Mikrosk Anat. — 1941. — Vol. 50.—
p. 446—453.
8>8.Ayajiki K-, Kindermann M., Hecker M. Intracel-lular pH and tyrosine phosphorylation but not calcium determine shear stress-induced nitric oxide production in native endothelial cells // Circ Res. — 1996. — Vol. 78. — P. 750—758.
&9.Ayard S., Weiss J. B. A new look et vitreous humour collagen // Biochem J— 1984.— Vol. 218. — P. 835—840.
90. Baasti S., Mathur U. Unusual intermediate-term
outcome in three cases of limbal autograft transplantation
// Ophthalmology. — 1999. — Vol. 106. — P. 958—963.
91. Bacin F., Kantelip В., Menerath J. M. Barrieres
hemato-oculaires Physiologie. Encicl. Ved. Chir. (Paris-
France), Ophtalmologie, 21020 D 20, 3—1988, 6 p.
92. Balazs E. A., Toth L.Z., Ozanics V. Cytological
studies on the developing vitreous as related to the
hyaloid vessel system // Graefes Arch Klin Exp Ophthal
mol.—1980. -Vol. 213.— P. 71—78.
93. Banerjee R., Lund R. D. A role for microglia in
the maintenance of photoreceptors in retinal transplants
lacking pigment epithelium // J Neurocytol. — 1992. —
Vol. 21. —P. 235—243.
94. Barak M.H., Weinreb R. N., Ryder M.I. Quan
titative assessment of cynomolgus monkey trabecular
cell phagocytosis and adsorption // Curr Eye Res. —
1988.— Vol. 7.— P. 445—452.
95. Barany E.H., Berrie C. P., Birdsall. N.J.M.
The binding properties of the muscarinic receptors of the
cynomolgus monkey ciliary body and the response to
the induction of agonist subsensitivity // Br J Pharma
col. — 1982. — Vol. 77. —P. 731—738.
96. Bassnett S. Coincident loss of mitochondria and
nuclei during lens fiber differentiation // Dev Dyn. —
1992. —Vol. 194.— P. 85—92.
97. Bassnett S. Mitochondrial dynamics in differenti
ating fiber cells of the mammalian lens // Curr Eye
Res. — 1992.—Vol. 11. — P. 1227—1234.
98. Baud С A., Balvoine C. The intimate structu
re of Descemet's membrane and its pathological deri
vatives // Br. J Ophthalmol.—1953.— Vol. 126. —
P. 290—295.
§9.Baycott B.B., Hopkins J. M. Microglia in the retina of monkey and other mammals its distinction from other types of glia and horizontal cells // Neurosci. — 1981. —Vol. 6.— P. 679—688.
100. Beck R.W., Savino P.J., Repka M.X. Optic disc structure in anterior ischemic optic neuropathy // Ophthalmology. — 1984.— Vol. 91 — P. 1334—1340.
101. Beckers H. J. M., Klooster J., Vrensen G. F. J. M.
Ultrastructural identification of trigeminal nerve endings
in the rat cornea and iris // Invest Ophthalmol Vis
Sci. — 1992. —Vol. 33.— P. 1979—1985.
102. Bednarski A. De l'excavation physiologique du
nerf optique // Arch Ophthalmol. — 1925. — Vol. 42. —
P. 5—11.
103. Behr C. Beitrag zur Anatomie und Klinik des
septalen Gewebes und des Arterieneinbaus im Sehner-
venstamm // A von Graefes Arch Ophthalmol. —
1935.—Vol. 134.— P. 227—234.
104. Bembridge B.A., Crawford G.N.C., Pirie A.
Phase-contrast microscopy of the animal vitreous // Br
J Ophthalmol. — 1952.—Vol. 36. — P. 131 — 138.
105. Ben Sira I., Riva С. Е. Fluorescein diffusion in
the human optic dis // Invest Ophthalmol.— 1975.—
Vol. 14.—P. 205—211.
106. Benedetti E. L., Dunia /., Bentzel C.J. A port
rait of plasma membrane specializations in eye lens
epithelium and fibers // Biochim Biophys Acta. —
1976.—Vol. 457.— P. 353—360.
107. Benedetti E. L, Dunia I., Ramaekers F.C.S.
Lenticular plasma membranes and cytoskeleton in Mo
lecular and Cellular Biology of the Eye Lens / Ed.
H. Bloemendal, John Wiley and Sons. — New York,
1981, —P. 137—142.
108. Berger E. Beitrage zur anatomie der zonula zi-
nii. A von // Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol. —
1882.— Vol. 28.— P. 28—35.
109. Berman E. R. Biochemistry of the Eye. — New
York: Plenum Press, 1991.—492 p.
110. Bignami A., Dahl D. The radial glia of Muller in
the rat reina and their responce to injury // Exp Eye
Res. — 1979. — Vol. 28. — № 1. — P. 63—69.
111. Bill A. A method to determine osmotically effec
tive albumin and gammaglobulin concentrations in tis
sue fluids its application to the uvea and a note on the
effects of capillary «leaks» on tissue fluid dynamics //
Acta Physiol. — 1968. — Vol. 6. — P. 238—247.
112. Bill A. Aspects of physiological and pharmalog-
ical regulation of uveal blood flow // Acta Soc Med
Upsalien. — 1962. —Vol. 67. — P. 122—128.
113. Bill A. Autonomic nervous control of uveal
blood flow // Acta Physiol Scand.—1962. —Vol. 56.—
P. 70—76.
114. Bill A. Blood circulation and fluid dynamics in
the eye //Physiol Rev.— 1975. —Vol. 55. —P. 383—390.
115. Bill A., Svedbergh B. Scanning electron micro
scopic studies of the trabecular meshwork and the canal
of Schlemm. An attempt to localize the main resistance
to outflow of aqueous humor in man // Acta Ophthal
mol. — 1972. — Vol. 50. — P. 295—302.
116. Bill A. The 1990 Endre Balazs Lecture: Effects
of some neuropeptides on the uvea // Exp Eye Res. —
1991. —Vol. 53.— P. 3—11.
117. Bill A. The drainage of aqueous humor // Invest
Ophthalmol. — 1975. —Vol. 14.— P. 1—9.
118. Bill A., Barany E.H. Gross facility, facility of
conventional routes, and pseudofacility of aqueous hu
mor outflow in the cynomolgus monkey // Arch Oph
thalmol. — 1966. — Vol. 75.— P. 665—672.
119. Bill A., hinder J. Sympathetic control of cereb
ral blood flow in acute arterial hypertension // Acta
Physiol Scand. — 1976. —Vol. 96. — P. 114—123.
120. Bill A., Tornqvist P., Aim A. Permeability of
the intraocular blood vessels // Trans Ophthalmol Soc
UK. — 1980.—Vol. 100.— P. 332—340.
121. Bird A. C. Bruch's membrane changes with age
// Br J Ophthal. — 1992. Vol. 76. — P. 160—168.
122. Birk D. E., Trelstad R. L. Extracellular compart
ments in matrix morphogenesis Collagen fibril, bundle,
326
Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА
lamellar formation by corneal fibroblasts // J Cell Biol. — 1984. — Vol. 99. — P. 2024—2032.
123. Bishop P. N. Identification in vitreous and mo
lecular cloning of opticin, a novel member of the fa
mily of leucine-rich repeat proteins of the extracellu
lar matrix // J Biol Chem. — 2000. — Vol. 275.—
P. 2123—2129.
124. Bishop P. N. Structural macromolecules and
supramolecular organisation of the vitreous gel // Prog
Ret Eye Res. — 2000. — Vol. 19.— P. 323—344.
125. Blakemore W. F. Microglial reaction following
thermal necrosis of the rat cortex An electron micro
scope study // Acta Neuropathol. — 1972. — Vol. 21. —
P. 11 — 19.
126. Blanks J. C. Morphology of the retina // In
Ryan S. J., Ogden T. E. (eds) Retina St. Louis, CV
Mosby, 1989.— Vol. 1, —P. 37—52.
127. Blatt H. L. Endothelial cell density in relation to
morphology // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1979.—
Vol. 18.— P. 856—859.
\28.Btatt H.L., Rao G.N., Aquavella J. V. Endothelial cell density in relation to morphology // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1979. — Vol. 18. — P. 856—859.
129. Blazynski C, Perez M.T.R. Neuroregulatory
functions of adenosine in the retina // Prog Ret Res. —
1991, —Vol. 11. —P. 293—332.
130. Boeke J. Innervationsstudien III Die Nerven-
versorgung des ciliaris und des sphincter iridis bei Sau-
gern und Vogeln // Z microsk-anat Forsch. — 1933. —
Vol. 33. — P. 233—240.
131. Boothe R. C, Dobson V., Teller D. Y. Postnatal
development of vision in human and nonhuman primates
// Anna Rev Neurosci. — 1985. — Vol. 8. — P. 495—
502.
132. Borcherding M.S., Blacik L.J., Sit tig R. A.
Proteoglycans and collagen fibre organization in hu
man corneoscleral tissue // Exp Eye Res. — 1975. —
Vol. 21. —P. 59—64.
133. Bos K.J., Holmes D.F., Meadows R.S., Kad-
ler К. Е., McLeod D., Bishop P. N. Collagen fibril orga
nisation in mammalian vitreous by freeze etchrotary
shadowing electron microscopy // Micron. — 2001.—
Vol. 32.— P. 301—306.
134. Boulton M. E. Ageing of the retinal pigment
epithelium // In: Osborne N. N., Chader G. J. (eds.)
Progress in retinal research. — Oxford: Pergamon Press,
1991. —Vol. 11. —P. 125—151.
135. Boulton M. E., McKechnie N. M., Breda /., Bay
ly M., Marshall J. The formation of autofluorescent
granules in cultured human RPE // Invest Ophthalmol
Vis Sci. — 1989. — Vol. 30. — P. 82—89.
136. Bourne W. M., Nelson L. R., Hodge D. O. Cent
ral corneal endothelial changes over a ten year period
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1997. — Vol. 38.—
P. 779—782.
137. Boycott В. В., Kolb H. The connections between
bipolar cells and photoreceptors in the retina of the
domestic cat // J Comp Neurol. — 1973. — Vol. 148. —
P. 91—98.
138. Boycott В. В., Wessle H. Morphological classifi
cation of bipolar cells of the primate retina // Eur J
Neurosci. — 1991, — Vol. 3. — P. 1069—1088.
139. Braun A., Ehinger F., Sundler K- Neuropep-
tide Y immunoreactive neurons in the guinea pig uvea
and retina // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1984. —
Vol. 25.— P. 1113—1123.
140. Bredt D.S., Snyder S.H. Nitric oxide: a phy
siologic messenger molecule // Ann Rev Biochem. —
1994.—Vol. 63.— P. 175—195.
141. Bregman B. S. Spinal cord transplants permit
the growth of serotoninergic axons across the site of
neonatal spinal cord transection // Dev Brain Res. — 1987.— Vol. 34.— P. 265—279.
142. Brenneisen P., Gogo I., Bayreuther K. Regula
tion of DNA synthesis in mitotic and postmitotic WI38
fibroblasts in the fibroblast stem cell system // J Cell
Biochem.—1993.— Vol. 17.— P. 152—159.
143. Bright man M. W. The distribution within the
brain of Ferritin injected into cerebrospinal fluid com
partments. II. Parenchymal distribution // Am J Anat.—
1965.— Vol. 117.— P. 193—200.
144. Brini A., Porte A., Stoeckel M.E. Morpho-
logie et structure du vitre adulte // In: Biologie et
Chirurgie du Corps Vitre / Eds. A. Brini, A. Bronner,
J. P. Gerhard, J. Nordmann. — Paul Masson, Paris,
1968.— P. 1.
145. Brittis P. A., Silver J. Multiple factors govern
intraretinal axon guidance a time lapse study // Mol Cell
Neurosci. — 1995. — Vol. 6. — P. 413—432.
146. Broekhuyse R.M., Kuhlmann E. D. Lipids in
tissues of the eye. VI. Sphingomyelins and cholesterol
esters in human sclera // Exp Eye Res.— 1972.—
Vol. 14.— P. 111 — 120.
147. Broekhyse R. M. The lipid composition of ag
ing sclera and cornea // Ophthalmologica.— 1975.—
Vol. 171, —P. 82—90.
148. Brolin S. E., Diderholm H., Hammar H. An
autoradiographic study on cell migration in the eye lens
epithelium // Acta Soc Med Ups. — 1961. — Vol. 66. —
P. 43—51.
149. Bron А. В., Tripathi R. C. Anterior corneal
mosaic. Further observations // Br J Ophthalmol. —
1969. — Vol. 53. — P. 760—764.
150. Bron A. J. Anterior corneal mosaic // Br J Oph
thalmol. — 1968. — Vol. 52. — P. 659—669.
151. Bron A. J. Photography of corneal pattern //
Arch Ophthalmol. — 1968.—Vol. 79. — P. 119—120.
152. Bron A. J. Vortex patterns of the corneal epithe
lium//Trans Ophthalmol Soc UK.—1973. —Vol. 93.—
P. 455—463.
153. Bron A. J., Tripathi R. C. Anterior corneal mosa
ic. Further observations // Br J Ophthalmol. — 1969. —
Vol. 53. — P. 760—768.
154. Bron A. /., Tripathi R. C, Tripathi B. J. Wolff's
anatomy of the eye and orbit / 8th ed. — London: Chap
man and Hall Medical, 1997.— 736 p.
155. Brown G.C., Shields J. A. Cilioretinal arteries
and retinal arterial occlusion // Arch Ophthalmol. —
1979.—Vol. 97.— P. 84—92.
156. Brown H.G., Ireland M., Kuszak J. R. Ultra-
structural, biochemical and immunological evidence of
receptor-mediated endocytosis in the crystalline lens
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1990. — Vol. 31,—
P. 2579—2585.
157. Brown N. A. P., Bron A. J. Lens Disorders. But-
terworths, London, Washington, 1996.
158. Brown N. The change in shape and internal
form of the lens of the eye on accommodation // Exp
Eye Res. — 1973.— Vol. 15.— P. 441—450.
159. Bruckner R. Methods of protracted research
on the aging of eyes // Ophthalmologica.— 1959.—
Vol. 138.— P. 59—66.
160. Bryson J. M., Wolter J. R., O'Keefe N. T. Gangli
on cells in the human ciliary body // Arch Ophthal
mol. — 1966. — Vol. 75. — P. 57—65.
161. Buller C, Johnson D. Segmental variability of
the trabecular meshwork in normal and glaucomatous
eyes // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1994. — Vol. 35. —
P. 3841—3851.
162. Burd H. /., Judge S. /., Flavell M. J. Mechanics
of accommodation of the human eye // Vision Res. —
1999.— Vol. 39. — №9. — P. 1591-1595.
Литература
327
163. 
Burstein N.L., Maurice D. M. Cryofixation of
tissue surfaces by a propane jet for electron microscopy
//Micron. — 1978.— Vol. 9.— P. 191—201.
164. Busacca A. Elements de Gonioscopie Normale,
Pathologiqueet Experimentale. — San Paulo, Brazil:
Typografia Rossolillo, 1945.
165. Buschmann W., Llnnert £>., Hofmann W. The
tensile strenght of human zonule and its alteration with
age // A von Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol. —
1978.— Vol. 206.— P. 183—191.
166. Bussow H. The astrocytes in the retina and
optic nerve head of mammals //Cell and Tissue Res. —
1980. - Vol. 206. — № 3. — P. 367—378.
167. Butler J.M., Ruskell G. L, Cole D.F. Effects
of VIHh (facial) nerve degeneration on vasoactive intes
tinal polypeptide and substance P levels in ocular and
orbital tissues of the rabbit // Exp Eye Res. — 1984. —
Vol. 39.— P. 523—531.
168. Butler T. L., McMenamin P.G. Resident and
infiltrating immune cells in the uveal tract in the early
and late stages of experimental autoimmune uveoretini-
tis // Invest Ophthalmol Vis Sci, — 1996. —Vol. 37. —
P. 2195—2210.
169. Cailliau P., Sung Nathans J., Adler R. Apopto-
tic photoreceptor cell death in mouse models of retini-
tis pigmentosa // Proc Natl Acad Sci USA. — 1994. —
Vol. 91. —P. 974—978.
170. Cajal S. R. Traumatic degeneration and re
generation of the optic nerve and retina // In: May R.
ed. Degeneration and regeneration of the nervous
system. — New York: Hafner, 1928.— Vol. 2.—
P. 583—596.
171. Calkins D. J., Tsukamoto Y., Sterling P. Micro-
circuitry and mosaic of a blue-yellow ganglion cell in
the primate retina // J Neurosci. — 1998. — Vol. 18. —
№9. -P. 3373—3385.
172. Calkins D.J., Tsukamot Y., Sterling P. Foveal
cones form basal as well as invaginating junctions
with diffuse ON bipolar cells // Vision Res. — 1996. —
Vol. 36.-P. 3373—3381.
173. Campbell D.G., Simmons R. J., Grant M. W.
Chost cells as a cause of glaucoma // Am J Ophthal
mol. — 1976. — Vol. 81. — P. 441—453.
174. Campbell F.W., Robson J.G., Westheimer С
Fluctuations in accommodation under steady viewing
conditions // J Physiol (Lond). — 1959.—Vol. 145. —
P. 579—585.
175. Campisi J. The biology of replicative senescence
// Eur J Cancer. — 1997. — Vol. 33 — P. 703—710.
176. Canning D. R., Hoke A., Malemud C. J. A po
tent inhibitor of neurite outgrowth that predominates in
the extracellular matrix of reactive astrocytes // Int J
Dev Neurosci. — 1996.— Vol. 14. — P. 153—175.
177. Carlson K. H., Bourne W.M., McLaren J. W.
Variations in human corneal endothelial cell morphology
and permeability to fluorescein with age // Exp Eye
Res. — 1988.— Vol. 47. — P. 27—41.
178. Caroni P., Schwab M. E. Two membrane
protein fractions from rat central myelin with inhibi
tory properties for neurite growth and fibroblast
spreading // J Cell Biol. — 1988. — Vol. 106.—
P. 1281 — 1288.
179. Casini C, Rickman D.W., Brecha N. С All
amacrine cell population in the rabbit retina // J Comp
Neurol. — 1995. —Vol. 356. P. 132—142.
180. Castenholz A. The vascular system of the albi
no rat iris and its suitability for vital microscopy and
experimental studies on microcirculation // Ophthalmol
Res. - 1971. — Vol. 2. — P. 358—365.
181. Castenholz A. Untersuchungen zur funktionel-
len Morphologic der Endstrombahn // In: Technik der
vitalmikroscopischen Beobachtung und Ergebrnsse ex-perimenteller Studies am Iriskreislaufder Albinoratte. — Franz Steiner, 1970.
182. Castro-Correira J. Studies on the innervation
of the uveal tract // Ophthalmologica.— 1967.—
Vol. 154. —P. 497—512.
183. Cenedella R. Cholesterol and cataracts // Surv.
Ophthal. — 1996. — Vol. 40, № 4. — P. 320—337.
184. Chaine G., Coscas G. Physiologie des vaisseaux
retiniens. Encicl. Ved. Chir. (Paris-France), Ophtalmolo-
gie, 21024 С 20, 11 — 1986, 6 p.
185. Chaitin M. H., Hall M. O. Defective ingestion of
rod outer segments by cultured dystrophic rat pigment
epithelial cells // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1983. —
Vol. 24.— P. 812—822.
186. Chan T.L., Grunert U. Horizontal cell con
nections with short wavelength-sensitive cones in the
retina: a comparison between new world and old world
primates // J Comp Neurol. — 1998. — Vol. 393.—
P. 196—209.
187. Chang £., Harley С. В. Telomere length and
replicative aging in human vascular tissue // Proc Natl
Acad Sci. — 1995. — Vol. 92. — P. 11190—11194.
188. Chang S. W., Ни F. R. Changes in corneal auto-
fluorescence and corneal epithelial barrier function with
aging // Cornea. — 1993. — Vol. 12. — P. 493—499.
189. Chan-Ling T. Glial neuronal and vascular inter
actions in the mammalian retina // Prog Ret Eye Res. —
1994.— Vol. 13.— P. 357—389.
190. Chapman G.B., Spelsberg W. W. The occur
rence of myelinated and unmyelinated nerves in the iris
angle of man and rhesus monkey // Exp Eye Res. —
1963.—Vol. 2.— P. 130—138.
191. Chatterjee A., Shah S., Doyle S. J. Effect of age
on final refractive outcome for 2342 patients following
refractive keratectomy // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1996. — Vol. 37. — P. 857—865.
192. Chen D. F., Schneider G. E., Martinou J. C. Bcl-2
promotes regeneration of severed axons in mammalian
CNS // Nature. — 1997. — Vol. 385. — P. 434—439.
193. Cheng H., Cao Y., Olson L. Spinal cord re
pair in adult paraplegic rats: partial restoration of
hind limb function // Science.— 1996.— Vol. 273.—
P. 510—513.
194. Chisholm I. A., Grierson I. Particulate phagocy
tosis by trabecular meshwork endothelium // Can J
Ophthalmol.—1977.—Vol. 12.— P. 293—302.
195. Cintron C, Covington H. I. Proteoglycan dis
tribution in developing rabbit cornea // J Histochem
Cytochem. — 1990. — Vol. 38. — P. 675—682.
196. Clark V.M. The cell biology of the retinal pig
ment epithelium // In Adler R., Farber D. (eds): The
Retina-A Model for Cell Biology, Part II. — Orlando FL
Academic Press, 1986. — P. 129—168.
197. Clowry G., Katarzyna S., Vrbova G. Trans
plants of embryonic motoneurones to adult spinal cord:
survival and innervation abilities // Trends Neurosci. —
1991. —Vol. 14.— P. 355—357.
198. Cogan D.G. Ophthalmic Manlations of Sys
temic. Vascular Disease. — Vol III. Major Problems in
Internal Medicine. — W. B. Saunders London, 1974.—
P. 132—141.
199. Cogan D. G., Kuwabara T. Focal senile trans-
lucency of the sclera // Arch Ophthalmol. — 1959. —
Vol. 62.— P. 604—612.
200. Cogan D. G., Toussaint D., Kuwabara T. Reti
nal vascular patterns Part IV. Diabetic retinopathy //
Arch Ophthalmol. — 1961. —Vol. 66. — P. 366—375.
201. Cohen A.I. The electron microscopy of the
normal human lens // Invest Ophthalmol. — 1965. —
Vol. 4.— P. 433—441.
328
Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА
202. 
Cohen A. I. Ultrastructural aspects of the human
optic nerve // Invest Ophthalmol. — 1967. — Vol. 6. —
p. 294—301.
203. Cohen A. I. The electron microscopy of the
normal human lens // Invest Ophthalmol.— 1965.—
Vol. 4. — P. 433.
204. Cole D. F. Ocular fluids // In: The Eye / 3rd
edition (ed. H. Davson). — New York: Academic Press,
1984.— P. 269—275.
205. Cole D. F. Secretion of the aqueous humour //
Exp Eye Res Suppl. — 1977. —Vol. 1. —P. 161 — 172.
206. Cole D. F., Monro P. A. G. The use of fluo-
rescein-labelled dextrans in investigation of 35. Kivi-
rikko K. I., Myllyla R. Biosynthesis of collagens // In:
Piez K. A., Reddi A. H. (eds): Extracellular Matrix Bio
chemistry. — New York: Elsevier, 1984. — P.83—112.
207. Coleman D. J. On the hydraulic suspension
theory of accommodation // Trans Am Ophthalmol
Soc. — 1986. — Vol. 84. — P. 846—853.
208. Coleman D. J. Unified model for accommodative
mechanism // Am J Ophthalmol. — 1970. — Vol. 69. —
P. 1063—1075.
209. Coleman D. /., Lizzie F. L. In vivo choroidal
thickness measurement // Am J Ophthalmol. — 1979. —
Vol. 88. — P. 369—377.
210. Collier R. Experimental embolic ischemia of
the choroid // Arch Ophthalmol. — 1967. — Vol. 77. —
P. 683—691.
211. Connor Т., Roberts A., Sporn M. Correlation of
fibrosis and transforming growth factor-beta type 2 le
vels in the eye // J Clin Invest. — 1989. — Vol. 83. —
P. 1661 — 1666.
212. Cordeiro M., Bhattacharya S., Schultz G. TGF-1,
-2 and -3 in vitro: biphasic effects on Tenon's fibroblast
contraction, proliferation and migration // Invest Oph
thalmol Vis Sci. — 1999. — Vol. 40. — P. 1962—1974.
213. Cordeiro M., Constable P., Alexander R. The
effect of varying mitomycin-c treatment area in glauco
ma filtration surgery in the rabbit // Invest Ophthalmol
Vis Sci. — 1997.— Vol. 38.— P. 1639—1646.
214. Cordeiro M., Gay J., Khaw P. Human anti-TGF-2
monoclonal antibody: a new anti-scarring agent for glau
coma filtration surgery // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1999. — Vol. 40. — P. 2225—2234.
215. Cordeiro M., Reichel M., Gay J. TGF-1, -2 and
-3 in vivo: effects on normal and mitomycin-c modulated
conjunctival scarring // Invest Ophthalmol Vis Sci. —
1999.—Vol. 40.— P. 1975—1982.
216. Corson M. A., James N. L., Latta S. E. Phospho-
rylation of endothelial nitric oxide synthase in response
to fluid shear stress // Circ Res. — 1996. — Vol. 79. —
P. 984—991.
217. Cotsaleris G., Cheng S. Z., Dong G. Existence of
slow-cycling limbal epithelial basal cells that can be prefe
rentially stimulated to proliferate: Implications on epithe
lial stem cells // Cell.— 1989. —Vol. 57. —P. 201—209.
218. Critchlow M., Bland Y., Ashhurst D. The effect
of exogenous transforming growth factor-beta 2 on heal
ing fractures in the rabbit // Bone. — 1995. —Vol. 16. —
P. 521—527.
219. Crooks J., Kolb H. Localization of GABA, gly-
cine, glutamate and tyrosine hydroxylase in the hu
man retina // J Comp Neurol. — 1992.— Vol. 315.—
P. 287—295.
220. Cross H. E., Jensen A. D. Ocular manifestations
in the Marfan syndrome and homocystinuria // Am J
Ophthalmol. — 1973. — Vol. 75. — P. 405—419.
221. Cserhati P., Szel A., Rohlich P. Four cone types
characterized by anti-visual pigment antibodies in the
pigeon retina // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1989. —
Vol. 30. — P. 74—83.
222. Cunha-Vaz J. G., Shakib M., Ashton N. Studies
on the permeability of the blood-retinal barrier. I. On the
existence, development and site of a blood-retinal barrier
// Br J Ophthalmol. — 1966. — Vol. 50. — P. 441—449.
223. Curcio C.A., Allen K-A. Topography of gangli
on cells in human retina // J Comp Neurol. — 1990. —
Vol. 300.— P. 5—11.
224. Curcio C. A., Hendrickson A. E. Organization
Topography. Current Concepts // In: Ophthalmology
(eds H.E.Kaufman, D.M.Albert, F. A. Jakobiec). —
W. B. Saunders Co, 1991.
225. Dacey D. M. Morphology of a small-field bistra-
tified ganglion cell type in the macaque and human reti
na//Vis Neurosci.—1993.—Vol. 10. —P. 1081 — 1093.
226. Dacey D. M. Parallel Pathways for Spectral
Coding in Primate Retina // Annu Rev Neurosci. —
2000. — Vol. 23. — P. 743—775.
227. Dacey D. M. Physiology, morphology and spa
tial densities of identified ganglion cell types in pri
mate retina // Ciba Foundation Symposium. — 1994. —
Vol. 184.— P. 12—21.
228. Dacey D. M. The mosaic of midget ganglion
cells in the human retina // J Neurosci.— 1993. —
Vol. 13.— P. 5334—5343.
229. Dacey D. M., Lee В. В. The «blue-on» oppo
nent pathway in primate retina originates from a distinct
bistratified ganglion cell type // Nature.— 1994.—
Vol. 367.— P. 731—742.
230. Dacey D. M., Lee В. В., Stafford D. K., Pokor-
ny J., Smith V. C. Horizontal cells of the primate reti
na: cone specificity without spectral opponency // Sci
ence. — 1996. — Vol. 271. — P. 656—659.
231. Dacey D. M., Petersen M. R. Dendritic field size
and morphology of midget and parasol ganglion cells
of the human retina // Proc Natl Acad Sci. — 1992. —
Vol. 89. — P. 9666—9675.
232. Daicker В., Guggenheim R., Cwyat L. Raster-
elektronenmikroskopische befunde an Netzhautinnen-
flachen II Hintere Glaskorperabhebung // A von Grae-
fes Arch Klin Exp Ophthalmol.— 1977.— Vol. 204.—
P. 19—25.
233. Danjo S., Friend J., Thoft R. A. Conjunctival
epithelium in healing of corneal epithelial wounds //
Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1987. — Vol. 28,-
P. 1445—1449.
234. Das A., Pansky В., Budd G. С Demonstration
of insulin-specific mRNA in cultured rat retinal glial cells
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1987. — Vol. 28.-
P. 1800—1811.
235. Das S. R., Bhardwaj N., Kjeldbye H., Gouras P.
Muller's cells of chicken retina synthesize 11-cis-retinol
// Biochem J. — 1992. — Vol. 285. — P. 907—916.
236. Davanger M. The suspensory apparatus of the
lens: The su
