Классификация алкалоидов (примеры алкалоидов каждой группы, их формулы и растения, содержащие эти алкалоиды).

Физико-химические свойства алкалоидов.

4. В каком виде (форме) алкалоиды находятся в растительном сырье?

- 5. Локализация алкалоидов

Качественные реакции на алкалоиды

Хроматографический анализ.

Извлечения алкалоидов из растительного сырья и очистка извлечений.

9. Разделение суммы алкалоидов.

10. Какие свойства алкалоидов лежат в основе методов количественного определения алкалоидов в растительном сырье?

11. Сущность методов количественного определения алкалоидов в лекарствен­ном растительном сырье (формулы и лекарственные растения, содержащие эти алкалоиды).

Литература

Семя дурмана индейского. ФС 42-1005-75. Трава термопсиса очередноцветкового. ФС 42-1281-79. Рожки спорыньи эрготаминового штамма. ФС 42-1432-80. Побеги секуринеги. ФС 42-100-81 Корень барбариса обыкновенного. ФС 42-1152-78. Орехов А. П. Химия алкалоидов. — М.: Изд-во АН СССР, 1955. Юнусов С. Ю. Алкалоиды. — Ташкент: Изд-во ФАН, 1968. Садыков А. С., Асланов X. А., Кушмурадов Ю. К. Алкалоиды хинолизидино- вого ряда. — М.: Наука, 1975

Орехов А. П. Химия алкалоидов растений СССР. — М.: Наука, 1965. Цесько А. И. Фармакологическое изучение барбариса: Автореферат канди­датской диссертации. М., 1973.

Биохимия растений/Под ред. Кретовича В. А. — М.: Мир, 1968 Кретович В. А. Биохимия растений. —М.: Высшая школа, 1980. Хроматография в тонких слоях/Под ред. Шталя Э. — М..^- Мир, 1965. Menske RHT. The alkaloids Chemistry and Physiology, v. IX, London, 1967,

ГЛАВА И. ГЛИКОАЛКАЛОИДЫ

Гликоалкалоиды, или стероидные алкалоиды, — это производ­ные циклопентанопергидрофенантрена с гетероциклическим атомом азота, сочетающие в себе свойства стероидных сапонинов и алкалои­дов, Строение их очень сходно со строением стероидных сапонинов:

н

но

но

В нашей стране гликоалкалоиды используются для получения гормональных препаратов типа кортизона.

Строение агликона и сахарного компонента. В основе струк­туры стероидных алкалоидов лежит скелет циклопентанопергидро- фенантрена, связанный с гетероциклической системой. В 3-м по­ложении находится группа ОН, через которую происходит присо­единение углеводной части молекулы. В положениях 10, 13, 18 име­ются метальные группы (—СН₃). У большинства гликоалкалоидов в кольце В в положении 5, 6 содержится двойная связь. Углевод­ная часть молекулы стероидных алкалоидов представлена, как и у сапонинов, сахарами: D-глюкозой, D-галактозой, L-рамнозой, L-арабинозой, D-ксилозой, L-фруктозой и кислотами D-глюкуро- новой и D-галактуроновой.

Классификация

Стероидные алкалоиды можно разделить на две группы. Первая группа — азотсодержащие аналоги сапонинов; они чаще всего встречаются в представителях рода паслен. Как и производные спи- ростана, гликоалкалоиды этой группы образуют нормальные (сола- содин) и изо-ряды соединений (томатидин):

томата див

 

Вторая группа — азотсодержащие стероиды, в которых кольца Е и F сконденсированы. Эти соединения чаще всего встречаются в представителях родов паслен и чемерица. Представителем этой группы является соланидин:

 

Эта группа в свою очередь подразделяется на две подгруппы: 1) йервератровые стероидные гликоалкалоиды, молекула которых содержит до 3 атомов кислорода; к типичным представителям дан­
ной подгруппы относятся йервин, рубийервин, изорубийервин, верамарин, вертицин и т. д.:

н

йервин

«✓N/N/

 

2) цевератровые стероидные алкалоиды, в молекуле которых более 3 атомов кислорода. Основные гликоалкалоиды этой под­группы — сабин, верацевин, термин.

§ 2. Физико-химические свойства

Стероидные алкалоиды, в основном, кристаллические вещества, хорошо кристаллизующиеся из 80%-ного.этилового спирта. Встре­чаются аморфные гликоалкалоиды, как, например, соланокапсидин.

Гликоалкалоиды — оптически активные соединения, имеющие определенный угол вращения. Они почти не растворяются в воде, этиловом эфире, хлороформе, растворяются в горячем этиловом спирте.

В результате наличия атома азота в агликоне стероидные алка­лоиды обладают основными свойствами и могут образовывать соли. Соли большинства гликоалкалоидов — аморфные вещества, кроме кристаллического хлоргидрата соланина, температура плавления которого 212 °С (с разложением). Как и соли других алкалоидов, соли гликоалкалоидов растворимы в воде.

Стероидные алкалоиды подвергаются ферментативному и кислот­ному гидролизам. Щелочной гидролиз проводится редко, так как некоторые гликоалкалоиды устойчивы к щелочам. Например, со­ланин устойчив по отношению к щелочи, но при нагревании его с разбавленной НС1 происходит расщепление на соланидин (агли- кон) и три молекулы Сахаров: D-глюкозу, D-галактозу, L-рамнозу.

§ 3. Методы выделения

Одним из распространенных методов выделения гликоалкалои­дов является кислая экстракция разбавленными кислотами с по- ледующим осаждением аммиаком. Используются разведенная сер­ная кислота, 0,5—2%-ный раствор азотной и ортофосфорной кислот, 2%-ный раствор холодной метафосфорной кислоты, 5%-ная уксус­ная кислота и др. Недостаток кислотной экстракции — плохая фильтрация рыхлого осадка «сырых» гликоалкалоидов, что частично можно избежать, применяя для подщелачивания не раствор амми­ака, а известковое молоко.

Экстракция подкисленными спиртами приводит к загрязнению экстрактов большим количеством сопутствующих веществ, которые затрудняют дальнейшее проведение анализа и препаративного выде­ления гликоалкалоидов и их агликонов.

При разделении гликоалкалоидов методом колоночной хрома­тографии в качестве сорбента применяют нейтральный оксид алю­миния (II) и (III) степени активности по Брокману, а элюирование проводят смесью бензола с хлороформом.

Свободные агликоны хорошо разделяются на неактивном ней­тральном оксиде алюминия, элюирование проводится смесью этил- ацетата и гексана в соотношении 7: 3 по объему.

Для идентификации, и установления строения гликоалкалоидов широко используются методы УФ, ИК, ПМР спектроскопии.

§ 4. Качественное определение

Для обнаружения стероидных алкалоидов и их агликонов в рас­тительном сырье применяются реакции осаждения и окрашивания, а также хроматографические методы анализа (тонкослойная, бу­мажная хроматография).

Гликоалкалоиды осаждаются холестерином, дигитонином; дают реакции окрашивания с я-оксибензальдегидом, анисовым альдеги­дом, резорцином, формальдегидом. Наиболее часто используется реакция Альберта (формальдегид в сильнокислой среде) — в при­сутствии гликоалкалоидов появляется малиново-красное окраши­вание.

При обнаружении стероидных алкалоидов методом бумажной хроматографии используются различные смеси растворителей: ме- тилэтилкетон, насыщенный водой; н-бутанол — уксусная кислота — вода (10:2: 5); н-бутанол — пиридин — вода (10: 2: 5) и др. Для обработки хроматограмм чаще всего применяются реактив Драгендорфа (оранжевые пятна) или концентрированный хлоро­формный раствор треххлористой сурьмы с последующим непро­должительным нагреванием при 105 °С (кирпично-красное окраши­вание).

При применении тонкослойной хроматографии в качестве сор­бентов используют силикагель. Системы растворителей, также весьма разнообразны: н-бутанол — метиловый спирт — диэтиламин (17:1: 2); хлороформ — метиловый спирт — уксусная кислота (18: 1: 1); хлороформ — 25%-ный раствор аммиака (1000: 1); гексан — ацетон (4:1) и др. Хроматограммы обрабатываются парами иода.

Методика качественных реакций. Приготовление извлечения: измельченное растительное сырье заливают 5%-ным раствором уксусной кислоты в соотношении 1: 10, взбалтывают на вибраторе 40 мин, затем отфильтровывают через бумажный фильтр. К 1 мл извлечения прибавляют несколько капель 1 %-ного раствора холе­стерина в этиловом спирте. Образуется осадок.

§ 5. Количественное определение

Существующие методы количественного определения стероидных алкалоидов можно разделить на следующие группы.

1. Титрометрические методы. Гликоалкалоиды хорошо отти- тровываются соляной кислотой с диметиловым желтым, а также потенциометрически с сурьмяным или стеклянным электродами. Недостаток титрометрических методов — длительность промывания технических гликоалкалоидов от аммиака.

2. Методы бронирования. Гликоалкалоиды, имеющие двойную связь в положении 5, 6, могут количественно бромироваться пири- динсульфатбромидом. Этот метод пригоден только для анализа препаратов соласодина, а не растительного сырья и полупродук­тов его производства.

3. «Сахарные» методы. После проведения кислого гидролиза гликоалкалоидов и осаждения агликонов проводят титрование отщепившихся Сахаров 0,1 н. перманганатом калия. Недостатком «сахарных» методов является то, что некоторые сахара могут выпа­дать в осадок вместе с «сырыми» гли коал кал оидами и, таким обра­зом, завышать результаты анализа.

4. Гравиметрические метрды. Эти методы разработаны в основ­ном для препаративных целей и часто комбинируются с колоночной хроматографией. Если метод не комбинируется с предварительным разделением на колонке, то определяется сумма гликоалкалоидов или их агликонов.. Схема метода сводится к следующему: гликоал­калоиды экстрагируют из растительного сырья разбавленным раст­вором H₂S0₄ с последующим осаждением их раствором аммиака. Полученный осадок гликоалкалоидов обрабатывают кипящим эти­ловым спиртом и гидролизуют разбавленным раствором НС1 при кипячении. После подщелачивания агликоны исчерпывающе экстра­гируют бензолом. Растворитель отгоняют, остаток высушивают при 120 °С до постоянной массы и взвешивают.

■5. Колориметрические методы. Хотя стероидные алкалоиды дают реакции окрашивания со многими альдегидами, для количе­ственного определения применяется лишь реакция с формальдеги­дом в сильнокислой среде (малиново-красное окрашивание), так как окрашивание с другими альдегидами не подчиняется закону Ламберта — Бера.

Методика количественного определения соласодина в траве паслена дольчатого (Herba Solani laciniati) (OCT 64-4-118—74). Методика основана на осаждении гликоалкалоидов аммиаком из уксуснокислого извлечения с последующим потенциометриче- ским титрованием НС1.

30 г (с точностью до 0,01 г) измельченного сырья (сито № 3) помещают в плоскодонную колбу вместимостью 1,0—1,5 л и зали­вают 600 мл 5%-ной уксусной кислоты. Колбу с содержимым поме­щают на нагретую водяную баню и поддерживают внутри колбы температуру 50—60 °С в течение 4 ч при периодическом поме­шивании. Во избежание испарения колбу закрывают корковой пробкой, в которую вставляют термометр. Затем уксуснокислое извлечение фильтруют через воронку Бюхнера или складчатый фильтр.

200 мл прозрачного фильтрата помещают в стеклянный стакан вместимостью 400 мл, прибавляют 60 мл 25%-ного раствора аммиака и нагревают на водяной бане до температуры внутри стакана 60— 65 °С. Охлаждают' на льду в течение 2—3 ч и выпавшие технические гликоалкалоиды отфильтровывают с помощью воронки Бюхнера через двойной бумажный фильтр при слабом отсасывании или через складчатый фильтр. Остатки гликоалкалоидов из стакана количе­ственно переносят на фильтр, смывая стакан маточником или 1 %-ным раствором аммиака. Жидкости с фильтра дают полностью стечь, после чего фильтр с гликоалкалоидами высушивают в су­шильном шкафу при 80—90 °С (в развернутом виде на чашке Петри). Сухой фильтр с гликоалкалоидами помещают в колбу № 1 вмести­мостью 250 мл, приливают 100 мл этилового спирта и гликоалка­лоиды экстрагируют при нагревании на водяной бане с обратным холодильником в течение 30—40 мин. Затем колбу снимают, эта- нольный раствор, декантируя, фильтруют через воронку с ватным тампоном в колбу № 2 вместимостью 250 мл. Этиловый спирт отгоняют на водяной бане досуха. В колбу № 1 добавляют этиловый спирт примерно до 100 мл и вновь экстрагируют 30—40 мин. Экстрагирование проводят 3—4 раза, собирая фильт­раты в колбу № 2, и отгоняют каждый раз этиловый спирт досуха.

Полноту извлечения гликоалкалоидов устанавливают с помощью раствора формальдегида в серной кислоте или паров иода.

После отгонки четвертой порции остатки этилового спирта выдувают воздухом (при нагревании на водяной бане, под тягой). К сухому остатку примешивают 5—10 мл 1%-ной уксусной кислоты и растворяют гликоалкалоиды при слабом нагревании на водяной бане.

К уксуснокислому раствору гликоалкалоидов приливают 5— 10 мл 25%-ного раствора аммиака и нагревают на водяной бане до 60—65 °С. Выпавшие гликоалкалоиды охлаждают в течение 1 ч на льду, жидкость с гликоалкалоидов фильтруют декантацией через складчатый фильтр, промывая гликоалкалоиды небольшими порциями 1 %-ного аммиака. (Осадок гликоалкалоидов для лучшей промывки нужно оставлять в колбе).

Промывание проводят до тех пор, пока фильтрат не станет бесцветным. Фильтр и колбу с осадком высушивают досуха в сушиль­ном шкафу при температуре 80—90 °С. Высушенный фильтр с осад­ком помещают в колбу № 2 и гликоалкалоиды растворяют при нагревании на водяной бане в 100 мл 95%-ного этилового спирта, прибавляя его небольшими порциями в колбу, и переносят раствор в стакан для потенциометрического титрования. Полученный раствор титруют потенциометрически 0,1 н. НС1. В начале титро­вания прибавляют по 0,5—1 мл 0,1 н. НС1, а когда разность потен­циалов достигнет заметной величины — по 0,05 мл.

I.мл 0,1 н. HCI соответствует 0,04137 г соласодина. Процент­ное содержание соласодина в пересчете на абсолютно сухую массу сырья х вычисляют по формуле

КО,04137 • 600 100 • 100 ⁼ т (100—w) 200

где V — объем 0,1 н. НС1, израсходованный на титрование, мл; т — масса навески воздушно-сухого сырья, г; w — потеря в массе при высушивании сырья, %.

Содержание соласодина в траве паслена дольчатого должно быть не менее 0,8 %.

1. Раствор формалина в H₂S0₄ готовят смешением 10 мл концентрирован­ной H2SO4 с 0,2 мл формалина Срок хранения не более 1 мес.

2. 2—3 капли последнего этанольного экстракта наносят на фильтровальную бумагу, высушивают и помещают в камеру с парами иода (не должно быть жел­того пятна).

Реактивы и оборудование: уксусная кислота 5 и 1%-ная; аммиака раствор 1 и 25%-ный; этиловый спирт (этанол) 95%-ный; H_sS0₄ (конц); формальдегид; иод; НС1 (0,1 н.),

Колбы плоскодонные вместимостью 1,0—1,5 л; стаканы стеклянные вмести­мостью 500 мл; воронки Бюхнера; колбы Бунзена; чашки Петри; колбы кругло- донные с нормальным шлифом вместимостью 250 мл; холодильники обратные стеклянные лабораторные с нормальным шлифом; установка для отгонки раство­рителей; стаканы для потенциометрического титрования; бани водяные лабора­торные; термометр ртутный стеклянный, лабораторный; фильтры бумажные; шкаф сушильный лабораторный; медицинская резиновая груша

Методика определения содержания соласодина в траве паслена дольчатого экспресс-методом. Экспресс-метод предназначен для быстрой оценки образцов паслена для отбора селекционных образ­цов с содержанием соласодина выше заданного значения. Метод имеет ориентировочное значение. В дальнейшем количественными методами устанавливается точное содержание соласодина. Пред­варительная оценка проводится при хроматографическом разделе­нии по размеру пятна и интенсивности окраски после проявления.

0,5 г измельченных листьев паслена (сито № 2) помещают в колбу вместимостью 25 мл, заливают 10 мл этилового спирта и экстрагируют с обратным холодильником в течение 30 мин на ки­пящей водяной бане. Содержимое колбы фильтруют в горячем виде через стеклянную воронку с плотным тампоном ваты в кони­ческую колбу вместимостью 50 мл. Осадок на фильтре промывают 15 мл этилового спирта (дробно). Фильтрат количественно перено­сят в мерную колбу вместимостью 25 мл. Объем экстракта доводят спиртом до 25 мл, раствор перемешивают. Отбирают пипеткой из колбы 1 мл раствора и из бюретки добавляют к данной пробе 3 мл этилового спирта (рабочий раствор). Пипеткой наносят 0,005 мл рабочего раствора на пластинку «Силуфол» на расстоя­нии 1 см от края пластинки. На одну пластинку можно наносить несколько проб. Расстояние между точками нанесения 12—15 мад,. Диаметр пятна на старте не должен превышать 5 мм. В качестве контроля используют рабочий раствор из листьев паслена доль­чатого, содержащих точно определенное количество соласодина.

Пластинку закрепляют вертикально в камере, погружая нижний край пластинки в растворитель не более чем на 1—2 мм. В качестве подвижной фазы используют систему хлороформ — метиловый спирт — вода (61! 32: 7). Для лучшего насы­щения с 3 сторон камеры помещают фильт­ровальную бумагу. Когда растворитель под­нимается до верхнего края пластинки, ее вынимают и сушат в течение 5 мин в су­шильном шкафу при 100 °С. Пластинку охлаждают на воздухе в течение 2—3 мин, равномерно опрыскивают 20%-ной HaS0₄ в этиловом спирте. Пластинку высушивают в течение 2—3 мин на воздухе и помещают в •открытый сушильный шкаф при 100 ^СС на 2—3 мин до появления малиновых пятен. Хроматограмму закрывают стеклом и визу-.ально сравнивают размер и интенсивность окраски пятен анализируемых и контроль­ных образцов. Через 20—30 мин, когда пятна начинают исчезать, хроматограмму просматривают повторно (рис. 33). Конт­рольный экстракт, из которого готовят ра­бочий раствор, можно хранить в плотно закрытой колбе в холодильнике 1 мес (если не образуется осадок).

Реактивы и оборудование: этиловый спирт (этанол) 95%-ный; метиловый спирт (метанол); хлороформ; H₂S0₄ (конц.); вода дистиллированная

Пластинки «Силуфол»; колбы плоскодонные с нор­мальным шлифом вместимостью 25 мл; холодильники обратные стеклянные лабораторные с нормальным шлифом; воронки стеклянные для фильтрования диа­метром 5 см; колбы конические вместимостью 25 и 50 мл; колбы мерныегвместимостью 25 мл; микропипетка измерительная вмести­мостью 0,01 мл; пульверизатор стеклянный герметический; камера хроматогра- фическая для ТСХ; шкаф сушильный лабораторный; бани водяные лаборатор­ные; плитка электрическая бытовая; бюретки вместимостью 10 мл; вата гигро­скопическая.

Вопросы для подготовки