Влияние внешних условий на спермиев вне организма животного 1 страница

 

Влияние температуры. И. И. Иванов (1908) доказал, что спермии лучше со­храняются при температуре от 0 до 15 °С. Более низкая и особенно высокая тем­пература очень пагубны для них. Темпе­ратура среды влияет на спермиев двоя­ко: усиливает или ослабляет их движе­ние, удлиняет или укорачивает пережи- ваемость.

Движение и переживаемость спер­миев—два взаимосвязанных явления. Если спермиев поместить в среду с тем­пературой 5 °С, они делаются малопод­вижными или не двигаются. При подо­гревании спермы до 10 °С их движения становятся интенсивнее, и дальше, по мере повышения температуры, актив­ность еще более возрастает и достигает максимума при температуре 38—41 °С. Таким образом, интенсивность движе­ния спермиев прямо пропорциональна температуре среды, в которой они нахо­дятся.

С повышением температуры среды срок жизни спермиев укорачивается. В. Д. Клемина установила, что при тем­пературе 46,5 "С белки спермиев перехо­дят в состояние, близкое к необратимой денатурации.

Низкие температуры менее вредны для спермиев. При постепенном охлаж­дении можно довести сперму до состоя­ния замораживания, а затем, после по­догревания, восстановить ее активность и даже способность к оплодотворению. Быстрое охлаждение спермы, скачкооб­разные переходы от высоких температур к низким вызываюту спермиев темпера­турный шок — реакцию спермиев на быстрое охлаждение. Она выражается потерей способности спермиев оживать при подогревании и разбавлении спер­мы специальными разбавителями, по­явлением уродливых форм спермиев. Если сперму быстро охладить хотя бы только до 15—17 "С, у спермиев может произойти температурный шок. Соглас­но исследованиям Ф. И. Осташко, шо­ковые явления у спермиев могут насту­пать при температуре 25 °С. Предложено много теорий и различных гипотез, но ни одна из них полностью не объясняет причин и механизмов возникновения температурного шока. Ф. И. Осташко считает, что в механизме шока важную роль играют осмотические и диффузи­онные процессы. Чем медленнее проте­кают эти процессы, тем меньше прояв­ляется температурный шок. Вот почему медленное охлаждение — основной способ предупреждения температурно­го шока спермиев.

Особенно легко возникает темпера­турный шок при охлаждении только что полученной спермы ниже 18 °С, поэто­му в помещениях для получения и ис­следования спермы температура не дол­жна быть ниже 18 °С. В сперме, имею­щей нейтральную или щелочную реак­цию, спермии сильнее реагируют на температуру, чем в сперме слабокислой реакции.

Низкие температуры отрицательно влияют на живые существа потому, что при замерзании разрушается цитоплаз­ма их клеток (во время кристаллизации). Для объяснения отсутствия отрицатель­ного влияния низких температур на спермиев предложена гипотеза о стек­ловидной форме замерзания цитоплаз­мы (витрификация). Согласно этой ги­потезе, цитоплазма при охлаждении мо­жет затвердевать стекловидно (без крис­таллов). При стекловидной форме в отличие от кристаллизации цитоплазма затвердевает без выделения воды, без резкого смещения молекул, вследствие чего не нарушается ее обычная структу­ра.

При постепенном охлаждении спер­мы до минус 6—10 °С в ней интенсивно происходит кристаллизация, что вызы­вает быструю гибель спермиев. Для пе­ревода жидкостей в стекловидное зат­вердевание необходимо при. приближе­нии к 0 °С быстро их охладить, чтобы «проскочить» критическую фазу. Для «расстекловывания» цитоплазмы спер­му нужно быстро нагревать, чтобы про­изошло расплавление тоже без фазы кристаллизации.

Возможность температурного шока следует учитывать, особенно при работе со спермой быка и барана, у которых вследствие малого объема эякулята сперма охлаждается очень быстро. Тем­пературный шок легко наступает при проведении искусственного осемене­ния в холодную погоду, при использова­нии холодных инструментов, при не­соблюдении правил хранения и пере­возки спермы.

Реакцию спермиев на температуру следует расценивать как их приспособ­ление в процессе эволюции. Известно, что в придатке тестикула спермии нахо­дятся в состоянии естественного анаби­оза при температуре более низкой, чем температура тела; вследствие этого они могут долго сохранять свою жизнеспо­собность. Только после смешения спер­миев с секретом придаточных половых желез они получают способность к ак­тивному движению. Попав же в половой аппарат самки, спермии (в условиях температуры тела) начинают двигаться с максимальной интенсивностью. Это обусловливает наиболее быстрое их продвижение по половым путям к яй- цепроводам и встречу с яйцевой клет­кой.

Влияние света. Рассеянный дневной свет не воздействует вредно на сперми­ев. Под влиянием же прямых солнеч­ных лучей движение спермиев вначале усиливается, а затем, через 20—40 мин, они погибают. Отрицательное действие солнечных лучей объясняют действием на спермиев ультрафиолетовой части спектра, активизирующей химические процессы, и термическим влиянием инфракрасных лучей. Поэтому при проведении искусственного осемене­ния нужно оберегать сперму от ультра­фиолетовых лучей солнца и бактери­цидных ламп.

Вся работа со спермой должна прово­диться в закрытых помещениях. По­скольку рассеянный свет не влияет на спермиев, то для сохранения спермы можно пользоваться обычной стеклян­ной посудой, а еще лучше из оранжевого стекла, которое задерживает ультрафио­летовые лучи. В лаборатории пунктов искусственного осеменения на окнах следует повесить капроновые или поли­этиленовые занавески.

Влияние осмотического давления. Спермии, находясь в сперме, легко под­даются воздействию ее сыворотки. В свою очередь, они сами могут изменять химический состав спермы посредством пополнения ее продуктами своей жиз­недеятельности. По этой причине вели­чина осмотического давления спермы непостоянная. У быка, например, она колеблется при 0 "С от 481,2—914,2 кПа (4,812 до 9,142 ат), в среднем равна 695 кПа (6,95 ат). В связи с этим важно учитывать как физические, так и хими­ческие свойства жидкой части спермы.

Спермии очень чувствительны к из­менению осмотического давления, т. е. концентрации веществ в жидкости, в которой они находятся. Ее осмотичес­кое давление должно быть равным внут­реннему осмотическому давлению спер­миев. Если спермии поместить в гипо­тонический раствор или в обыкновен­ную воду, они быстро погибают вследствие повышения внутреннего давления. Под влиянием гипотоничес­кого раствора хвосты спермиев набуха­ют и закручиваются кольцом или полу­кольцом. Если сперму смешать с гипер­тоническим раствором, спермии тоже погибнут, но уже от обезвоживания. Они сморщиваются, их хвосты приобре­тают зигзаговидную форму. Исключи­тельно губительным для спермиев явля­ется быстрое изменение осмотического давления. При прочих благоприятных условиях спермии могут сохранять свою жизнеспособность только в изотоничес­ких растворах.

У спермиев животных разных видов осмотическое давление неодинаково. Так, раствор виноградного сахара бу­дет изотоничен сперме барана в концен­трации 6,4 %, быка и хряка — 6, жереб­ца — 7,2, кролика — 5,4, собаки — 5,7 %. Раствор тростникового сахара (сахаро­за) изотоничен сперме жеребца при 11%-ной концентрации. Спермии меньше реагируют на отклонение осмо­тического давления в сторону гиперто­нии, чем в сторону гипотонии.

При искусственном осеменении жи­вотных необходимо строго следить за тем, чтобы все растворы, применяемые для разбавления спермы, были изото- ничными и чтобы сперма не соприкаса­лась с водой. Обычная питьевая вода мо­жет содержать (в зависимости от усло­вий местности) значительное количе­ство различных солей, поэтому раствор, приготовленный без учета солевого со­става воды, может оказать вредное влия­ние на спермиев.

Надо оберегать сперму от испарения ее жидкой части, например от подсыха­ния в спермоприемнике, при исследова­нии под микроскопом и при других ма­нипуляциях, при которых может повы­ситься концентрация солей в сперме. Надо оберегать сперму и от недостатка солей; например, несколько капель дис­тиллированной воды, образовавшейся на стенках спермоприемника вслед­ствие разности температур (конденса­ция), могут пагубно повлиять на эякулят барана или быка. Очень важна степень разбавления спермы. Чем она выше, тем чувствительнее спермии к отклонению от изотонии.

Влияние реакции среды. При работе со спермой нужно учитывать реакцию сре­ды, т. е. концентрацию водородных ионов, которая влияет на обмен ве­ществ, активность и переживаемость спермиев. Наиболее благоприятной для спермиев считается среда, рН которой колеблется для быка в пределах 6,9—7,0, для барана — 7,0—7,2, для хряка — 7,2— 7,5, для петуха — 7,2 и для кролика — 6,8. В кислой (рН 6,0 и ниже) и в силь­нощелочной средах спермии погибают.

Переживаемость спермиев вне орга­низма зависит от свойств кислоты. Под воздействием органических кислот (мо­лочной, уксусной, янтарной, масляной и др.) движения спермиев прекращают­ся при небольшой кислотности среды. Неорганические кислоты (НС1, Н₂80₄, Н₃Р0₄ и др.), наоборот, даже в значи­тельных концентрациях не влияют от­рицательно на спермиев. Разница воз­действия на спермиев органических и неорганических кислот объясняется не­способностью свободных ионов прони­кать в клетку, а следовательно, невоз­можностью влияния Н-ионов внешней среды на внутриклеточные реакции. Минеральные кислоты полностью дис­социированы в растворах, поэтому и не могут влиять на реакции, протекающие в спермиях. Растворы органических кислот всегда содержат молекулы, не распавшиеся на ионы, поэтому их моле­кулы проникают через оболочку спер­миев, разлагаются в них на ионы, обус­ловливая внутриклеточное подкисле- ние. Надо учитывать и буферные свой­ства спермы. Вне организма буферность спермы — основной регулятор ее кис­лотности. У животных разных видов она неодинаковая. Высшей буферностью обладает сперма барана, затем быка и хряка, низшей — сперма жеребца.

Влияние химических веществ. В прак­тике искусственного осеменения, не­смотря на соблюдение всех правил асеп­тики, полученная сперма всегда более или менее загрязнена бактериальной флорой. Стремление специалистов най­ти такое дезинфицирующее средство, которое могло бы действовать бактери­цидно на микрофлору, не влияя отрица­тельно на спермиев, не увенчалось успе­хом. Исследования показали, что ни одно из современных дезинфицирую­щих веществ не может считаться без­вредным для спермиев. В ничтожных дозах, неуловимых даже тончайшими химическими реакциями, они вредно влияют на спермиев. Этим следует объяснить неудачи искусственного осе­менения животных, когда его проводят в ветеринарных лечебницах, амбулатори­ях или когда используют те же инстру­менты, которые применяются во время лечебной работы.

Установлено, что спермиев быстро убивают ртути дихлорид (сулема) в дозе 0,000003 г, перманганат калия в дозе 0,00004 г, лизол, креолин, уксусная кис­лота в дозе 0,0003 г на 1 г спермы. Щело­чи и кислоты, эфир, нашатырный спирт, скипидар — сильные яды для спермиев. Оксиды свинца, меди, желе­за, серебра также очень ядовиты для спермиев. Поэтому в практике искусст­венного осеменения пользуются стек­лянными или никелированными инст­рументами.

Токсичными для спермиев могут быть также резиновые камеры, дистил­лированная вода, полиэтиленовые при­боры и др. При обработке резиновых ка­мер различными моющими средствами и кипячении в дистиллированной воде в течение часа токсичность резины не ис­чезает. Это указывает на необходимость обязательной биологической оценки каждого прибора и препарата, выпуска­емых для целей искусственного осеме­нения животных.

Несмотря на то что в принципе при искусственном осеменении противопо­казано применение дезинфицирующих средств, все же для обеззараживания ин­струментов вынужденно пользуются ими. Наиболее приемлем для этого эти­ловый спирт (этанол). По сравнению с другими дезинфицирующими средства­ми он легче удаляется с инструментов (быстро испаряется), кроме того, он хо­рошо растворяется в воде. Однако надо иметь в виду, что 0,5%-ный раствор спирта очень быстро убивает спермиев. Спирт-сырец денатурированный, недо­статочно очищенный от сивушного мас­ла и других примесей, совершенно не­пригоден в работе по искусственному осеменению животных.

Влияние микробной и грибковой заг­рязненности. Имеется прямая связь меж­ду степенью микробной, грибковой заг­рязненности, качеством спермы и опло- дотворяемостью животных. В естествен­ных условиях у здоровых производи­телей в извитых канальцах семенника, придатках, спермиопроводах и началь­ной части уретры микроорганизмы от­сутствуют. Таким образом, сперма ин­фицируется при ее прохождении через мочеполовой канал и соприкосновении с внешней средой. Количественный и качественный состав микроорганизмов в сперме сильно колеблется в зависи­мости от здоровья, гигиенического со­стояния производителя, стерильности искусственной вагины, манежа, лабо­ратории, срока хранения спермы и многих других факторов. Особенно много микроорганизмов отмечается в воздухе помещения, где содержатся производители. При плохих гигиени­ческих условиях в 1 см³ воздуха нахо­дится до 1,6 млн микроорганизмов. У быков, выращенных в плохих гигиени­ческих условиях, в 1 мл спермы содер­жится от 85 до 230 млн микроорганиз­мов (П. Маринов). У хряков одним из источников сильного загрязнения спермы микроорганизмами является дивертикул препуция (слепой мешок). После дивертикулоэктомии микробное загрязнение спермы резко снижалось, повышалась оплодотворяемость и пло­довитость свиноматок (И. Г. Мороз, М. П. Рязанский).

Загрязнение спермы патогенными микроорганизмами может обусловить распространение при искусственном осеменении трихомоноза, вибриоза, бруцеллеза, туберкулеза, паратуберку- леза, лептоспироза, ящура и других ин­фекционных и инвазионных болезней. Сперма — хорошая питательная среда для сохранения и размножения многих патогенных и непатогенных микроорга­низмов. При этом ни антибиотики, ни низкая температура при длительном хранении спермы не уменьшают коли­чество микробных тел и не обеспечива­ют ее обеззараживания, так как видовой состав микробов необычайно разнооб­разен. В видовом отношении микро­флору в сперме подразделяют на четыре группы: сапрофитная, патогенная, ус­ловно-патогенная, протозои и риккет- сии.

Из условно-патогенной микрофлоры в сперме быков-производителей обна­руживают синегнойную и кишечную па­лочки, стафилококки, стрептококки, протеи и др. Наиболее патогенной явля­ется синегнойная палочка.

Г. В. Зверева и А. Н. Репко установи­ли, что в свежей и разбавленной сперме наряду с бактериями встречаются гри-

Рис. 19. Микробы на хвосте спермия (увеличение 3800 х 3)(Г. В. Зверева и Л. А. Черномаз)

 

бы, обладающие патогенными и токси­ческими свойствами. Они выделили грибы 21 вида. Такие патогенные грибы, как СапсМа а1Ысапк, Акрег^Шик ГитщаШз, ЫсЫЬе1ггпа агутЫГега, обус­ловливают возникновение эндометри­тов у коров, а при наступлении беремен­ности вызывают гибель эмбрионов и плодов.

Микробы, попавшие в сперму, рас­полагаются в основном около спермиев, а часть из них в 1 —3 ряда — непосред­ственно на сперм иях — на головке, шейке, теле и хвосте (рис. 19). При воз­действии микробов происходит набуха­ние, а затем разрушение, распад перфо- ратория (колпачка) головки и всей обо­лочки спермия.

Для осеменения допускают сперму с содержанием в 1 мл не более 5 тыс. мик­робных тел при отсутствии патогенной микрофлоры и синегнойной палочки. Свежая неразбавленная сперма произ­водителя должна иметь колититр (наи­меньшее количество исследуемого ма­териала, в котором содержится одна ки­шечная палочка) не более 1:10.

 

МЕТОДЫ ПОЛУЧЕНИЯ СПЕРМЫ

 

При выборе метода получения спер­мы следует ориентироваться на такой, который отвечает следующим основ­ным требованиям: позволяет получать весь эякулят без всяких потерь; не сни­жает количества и жизнеспособности спермиев; гарантирует здоровье произ­водителей от травм и особенно от ин­фекционных болезней; прост техничес­ки, выполним в производственных ус­ловиях без сложного оборудования; обеспечивает стерильность получения спермы.

Все существующие методы получе­ния спермы можно разделить на урет­ральные, позволяющие получать сперму непосредственно из уретры самца, и влагалищные, заключающиеся в соби­рании спермы из влагалища самки после ее естественного осеменения.

Уретральные методы по­лучения спермы. Русский ме­тод получения спермы разработали в 1931 г. Н. В. Комиссаров, В. И. Липатов,

И. И. Родин. Сущность его заключается в применении искусственной вагины, позволяющей воспроизводить механи­ческие и термические раздражения не­рвных окончаний полового члена про­изводителя и получать от него полно­ценный эякулят.

Искусственная вагина — это прибор, состоящий из цилиндра, изготовленно­го из металла, резины или эбонита, в просвет которого вставлена эластичная резиновая трубка. Концы резиновой трубки завернуты на концы цилиндра, благодаря чему между внутренней по­верхностью цилиндра и наружной по­верхностью резиновой трубки образует­ся замкнутое пространство," сообщаю­щееся с внешней средой через патрубок, предназначенный для вливания воды и нагнетания воздуха между стенками ци­линдра и резиновой трубки. Один конец искусственной вагины остается откры­тым, а на другом укрепляют спермопри- емник для собирания спермы. Конст­
рукция искусственных вагин имеет ва­риации в зависимости от вида живот­ных.

Искусственная вагина для жеребца со­стоит из алюминиевого цилиндра, су­живающегося впереди и оканчивающе­гося горловиной, на которую заворачи­вают передний конец резиновой камеры и надевают спермоприемник в виде ши­рокого резинового стакана. В середине цилиндра имеется патрубок с завинчи­вающейся металлической пробкой (рис. 20). Путем отвинчивания и завин­чивания пробки можно регулировать давление в полости искусственной ваги­ны. Сбоку к цилиндру прикреплена руч­ка для удобства фиксации вагины. При получении спермы в холодном помеще­нии на вагину надевают чехол.

Искусственная вагина для быка образ­ца 1942 г. имеет цилиндр из толстой ре­зины и эластичную камеру, концы кото­рой завернуты на концы цилиндра. Концы резиновой камеры на цилиндре закрепляются резиновыми кольцами.

Рис. 21. Искусственные вагины для быка конструкции: А— образца 1942 г.; Б —И. И. Родина; В —датская; Г—английская; 1—спермоприемник; 2—цилиндр; 3— камера; 4—резиновые кольца; 5 —баллонообразное расширение; б—резиновая трубка; 7— стеклянный спермоприемник

Для наполнения вагины водой и воз­духом на цилиндре имеется патрубок, в который вставлен эбонитовый краник. На одном из концов искусственной ва­гины фиксируется резиновым держате­лем стеклянный двустенный спермо-

12 3 4 Рис. 20. Искусственная вагина для жеребца: 1 — цилиндр; 2 — патрубок с трубкой; 3 — горловина;4— спермоприемник

 

приемник. Исследования И. И. Родина показали, что при естественном осеме­нении во влагалище коровы кончик по­лового члена быка описывает почти полный круг диаметром 10—14 см. При получении спермы в искусственную ва­гину из-за узости ее цилиндра кончик пениса сгибается в сторону. По этой причине вследствие болезненности у производителя наступает торможение рефлекса эякуляции. Учитывая указан­ную особенность, И. И. Родин сконст­руировал более совершенную искусст­венную вагину с баллонообразным рас­ширением для свободного движения ко­нечной части полового члена. В этом случае эякуляция приближается к есте­ственному акту без болевых ощущений и сжатия мочеполового канала.

В искусственных вагинах указанных образцов при опускании их спермопри- емником вниз после эякуляции микро­организмы, осевшие на внутренней по­верхности резиновой камеры, смешива­ются со спермой и вместе с ней попада­ют в спермоприемник. Этот недостаток, снижающий санитарные качества спер­мы, устраняют укорочением искусст­венной вагины образца 1942 г. и присое­динением к ней специальной конусооб­разной насадки из прозрачного термо­стойкого органического стекла с герметичным спермоприемником. Во время совокупительного толчка кончик полового члена быка выводится из ис­кусственной вагины в просвет насадки и не соприкасается с ее стенками; здесь происходит выделение спермы непос­редственно в спермоприемник, что обеспечивает ее стерильность,

Рис. 22. Схема Харьковской технологии асептического получения, разбавления, хранения и использования спермы быков:

1 — механическое чучело; 2—искусственная вагина с полученным эякулятом; 3 — часть спермоприемника с эякулятом загерметизирована и отделена от искусственной вагины; 4 —определение массы спермы; 5 — отделение от спермопри­емника чехла-пробирки с пробой спермы для оценки; 6— штатив для спермоприемников; 7— отбор пробы спермы в микропипетку из чехла-пробирки 8—взятие пробы спермы для микроскопирования 9—устройство для добавления разбавителей в спермоприемник: 10—переливание разбавленной спермы из спермоприемника в трубку для расфасов­ки; //—автомат ИУЖ для дозировки и герметизации доз спермы; 12—туба, служащая емкостью для накопления и хранения доз спермы; 13— устройство для эквилибрации и замораживания спермы; 14—замораживание спермы в ши- рокогорлом сосуде с жидким азотом; 15— шприц с дозой спермы; 16— инструмент для введения спермы в облицованных гранулах визоцервикальным способом или цервикальным с ректальной фиксацией шейки матки

За рубежом применяют укороченные искусственные вагины (длина цилиндра 33 см) с уменьшенным диаметром. К од­ному из концов вагины присоединяют резиновую конусообразную трубку дли­
ной 17 см со стеклянным спермоприем- ником в виде пробирки (рис. 21). Перед получением спермы на резиновую труб­ку со спермоприемником надевают спе­циальный теплоудерживающий чехол. В момент глубокого совокупительного движения кончик пениса безболезненно загибается в резиновой трубке в сторону и происходит нормальная эякуляция. Широко используют укороченную ис­кусственную вагину (цилиндр длиной 30 см) с разовым спермоприемником из полиэтиленовой пленки (рис. 22). Име­ются и другие модели приборов, но все они построены по одному принципу.

Искусственная вагина для барана со­стоит из эбонитового цилиндра, она не содержит специальных колец для фик­сации резиновой камеры, концы ее прочно удерживаются на цилиндре са­мостоятельно. Отверстие патрубка, на­ходящегося на середине цилиндра, ши­рокое, и в него вставляется резиновая пробка с эбонитовым краником.

Искусственная вагина для хряка. Для получения спермы от хряков пользуются укороченной искусственной вагиной, применяемой для быков, или одной из моделей А. В. Квасницкого. Укорочение искусственной вагины, предназначен­ной для быков, производят с учетом дли­ны пениса хряка. При слишком корот­кой вагине наступает торможение поло­вых рефлексов, а при длинной — потеря спермы (ее обратное вытекание). Поэто­му необходимо производить индивиду­альный подбор длины цилиндра. Спер­моприемником служит темная широко- горлая стеклянная банка вместимостью 500 мл с пластмассовым фильтром, кото­рый можно заменить сложенной вдвое стерильной марлей. Спермоприемник присоединяют к вагине с помощью от­резка резиновой камеры, на котором сверху делают отверстие диаметром око­ло 3 мм для выхода воздуха из спермоп- риемника в момент наполнения его спермой. На спермоприемник надевают ватный или поролоновый чехол. В после­днее время стали использовать разовые спьрмоприемники из полиэтиленовой пленки. Их применение наряду с други­ми мероприятиями снижает микробную загрязненность спермы.

А. В. Квасницкий предложил элект­рическую и водоналивную искусствен­ные вагины (рис. 23). Обе они имеют дву­стенные металлические цилиндры и соб­ственно вагины. В электрической искус­ственной вагине вода быстро нагревается электросвечой, расположенной в ниж­ней части между стенками цилиндра. Пе­ред получением спермы свечу необходи­мо отключить от сети. Водоналивную ис­кусственную вагину заправляют горячей водой. Собственно вагину (коническую металлическую трубку с патрубком и зак­репленной резиновой камерой) вставля­ют в просвет нагретого металлического цилиндра, смазывают внутреннюю по­верхность камеры стерильным вазели­ном и накачивают через патрубок воздух, давление которого контролируют с по­мощью водного манометра (нормальное давление 45—50 см вод. ст.). Спермопри­емник (рис. 23, В) изготовлен из про­зрачной пластмассы. Он состоит из гра­дуированного цилиндрического стакана вместимостью 600 мл и навинчивающе­гося на него колпака. Для фильтрации спермы в процессе ее получения в спер­моприемник вставляют специальный фильтр. Присоединяют спермоприем­ник к вагине при помощи резиновой со­единительной трубки.

Главный недостаток всех искусственных ва­гин — непостоянство температуры в приборе. Для создания постоянной оптимальной температуры В. В. Петропавловский и Н. А. Чабовская сконст­руировали искусственную вагину с электрообог­ревателем в виде гибкой нихромовой электроспи­рали, вмонтированной в межстенное простран­ство. Постоянство температуры обеспечивается биметаллической пластинкой. Прибор питается от сети 220 В, нагревается через 6—8 мин после включения.

Для получения спермы от баранов И. И. Ро­дин предложил специальный прибор — эякуля- тор, в котором использована закономерность тер­мической реакции при плавлении и кристаллиза­ции глауберовой соли и гипосульфита, что позво­ляет поддерживать постоянную температуру около 30 мин.

Искусственная вагина для кролика со­стоит из стеклянного баллона с двумя отверстиями, вокруг которых оттянуты выступы для укрепления внутренней ре­зиновой трубки. Заполняют вагину теп­лой водой через отходящие от баллона два патрубка, соединенных с эбонито-

Я В Рис. 24. Искусственные вагины(из К. Братанова): А — для петуха; Б — для селезня

 

выми кранами. В качестве спермопри- емника используют небольшую пробир­ку, которую присоединяют к стеклянно­му баллону рези новой муфтой. Искусст­венная вагина кролика отличается срав­нительно большим объемом баллона для воды, чтобы быстро не охлаждался эяку­лят.

Рис. 23. Искусственные вагины для хряков: А — электрическая; Б — водоналивная: / — термометр; 2— отверстие для заливки воды; 3— трубка для накачивания воздуха; 4— кожух; 5— резиновая камера; 6 — электросвеча; В — спермоприемник к искус­ственной вагине: 1 — колпак; 2 — фильтр; 3 — стакан; 4 — резиновая трубка для соединения с искусствен­ной вагиной

Искусственная вагина для птицы. Ва­гина для петуха состоит из основного цилиндра, сделанного из твердого кау­чука воронкообразной формы (рис. 24). Длина вагины 5 см, диаметр у входа 5 см, у выхода 1,5 см. Внутренняя трубка ва­гины сделана из эластичного каучука. В эту вагину получают сперму и от индю­ков. Искусственная вагина для селезня состоит только из основного цилиндра. Ее длина 10 см. Входная часть имеет во­ронкообразную форму, что облегчает введение полового члена. Ее диаметр 5 см, а на остальном протяжении вагины 1,5 см.

Получение спермы посредством искус­ственной вагины. У животных всех видов метод искусственной вагины позволяет получать сперму двумя путями: 1) на самку, самца или кастрата и 2) на мане­кен.

Сперму на животное получают в об­становке, обычно создаваемой при есте­ственном осеменении. Его лучше поме­щать в станок. В момент садки техник держит подготовленную вагину справа на уровне таза животного. При получе­нии спермы на искусственную вагину требуется определенный навык. Нельзя подставлять вагину к головке полового члена преждевременно или, наоборот, поздно, так как это обусловливает тормо­жение эякуляции. Ее следует подстав­лять в тот момент, когда половой член производителя приближается к крупу манекена. При этом у быка, барана и хря­ка левой рукой препуциальный мешок вместе с половым членом смещают впра­во так, чтобы его головка была направле­на в отверстие искусственной вагины, которую удерживают другой рукой спра­ва от таза животного-манекена на уровне тазобедренного сустава (рис. 25). При получении спермы от хряка искусствен­ную вагину следует прижать во время эякуляции к боку таза свиноматки и слег­ка наклонить конец вагины со спермо­приемником для того, чтобы эякулят бы­стрее стекал в последний.

Делать это надо осторожно, чтобы не вызвать болевых ощущений. В половом члене быка много чувствительных нерв­ных окончаний, и они сосредоточены главным образом в головке пениса. Одни из них, так называемые колбы Краузе, воспринимают температурные раздражения. При этом поверхностно лежащие колбы Краузе возбуждаются под влиянием холода, а глубоко лежа­щие — под воздействием тепла. Другие нервные окончания — Фатер-Пачиние- вы тельца — воспринимают давление; они находятся в висцеральном листке препуция. Имеются еще тельца Мейс- нера, являющиеся органами осязания, и нервные чувствительные окончания, воспринимающие боль. Чрезмерное возбуждение этих нервных окончаний тормозит проявление совокупительного рефлекса и эякуляции. У хряка и жереб­ца в отличие от быка и барана эякуляция
происходит в результате соответствую­щих раздражений нервных окончаний не только головки, но и основания по­лового члена.