Внутренние незаразные болезни с клинической диагностикой и рентгенологией. Правила исследования больных животных

Правила исследования больных животных. Приемы фикцации их и техника безопасности.

Научились правильно оформить регистрацию историю болезни животных, внести данные анамнеза до заболевания и после заболевания, затем провели полный комплекс клинических исследовании

Ведение истории болезни Историю болезни животного заполняют чернилами, разборчиво, на специальном бланке, соблюдая определенную последо­вательность изложения материалов.

Во всех ее разделах, за исключением эпикриза (заключение), лишь констатируют полученные све­дения или результаты исследований, отражающих объективные показатели общего состояния животного, а также состояние его отдельных органов и сис­тем в данное время (Status praesens). При этом не следует без лишней необходимости подчеркивать ме­тод исследования. Например (при осмотре), сердечный толчок не просматривается (при аускультации) патологические шумы в области легких не прослушиваются и т.д.

Характеризуя сведения о жизни животного до заболевания (Anamnesis vitae), указывают: происхож­дение животного, условия содержания, рацион, водопой, уход, беременность и ее срок, продуктивность; болело ли животное раньше, когда, чем; какие вете­ринарные обработки и исследования проводились и их результат (см. результаты лабораторных исследовании).

Сведения о болезни (Anamnesis morbi) включа­ют: время заболевания; при каких обстоятельствах, с какими признаками оно было обнаружено; лечи­лось ли животное, где, чем, сколько и кем; есть ли другие аналогичные заболевания в хозяйстве. Ре­зультаты собственных наблюдений или исследова­нии в этот раздел не заносят.

При записи в историю болезни результатов иссле­дования больного животного (Status praesens) для примера учащиеся могут использовать приведенное ниже описание состояния организма здоровой коровы.

Ветеринарная хирургия

По предмету ветеринарная хирургия отрабатывали приемы фиксации животных, медикаментозного обездвиживания их, подготовку операционного поля и рук, стерилизацию инструментов.

Антисептика и асептика

Инъекции — один из широко распространенных способов введения жидких лекарственных веществ в толщу тканей, в полости организма, в сосудистое русло. Лекарственные вещества инъецируют в том случае, если некоторые из них невозможно задать через рот или если необходимо получить быстрый лечебный эффект.

Инъекции бывают диагностическими, лечебными и профилакти-
ческими; широко пользуются инъекциями при различных способах
обезболивания. В зависимости от путей введения жидкости инъекции
различают внутрикожные, подкожные, внутримышечные, внутривенные,
внутриартериальные, внутрибрюшинные, внутрисиновиальные,

внутрикостные и др. Инъекция больших количеств жидкости самотеком или под давлением — это вливание (инфузия). Для инъекций применяют шприцы различной емкости (рис 1), инъекционные иглы различной длины и поперечного сечения. Размеры игл обозначают номерами, состоящими из четырехзначных или пятизначных чисел: 0428, 0840, 0890, 1060, 1090, 12120, 12150 и др., в которых две первые цифры обозначают в миллиметрах — удесятеренный диаметр иглы, а остальные — длину иглы. В настоящее время используют специальные инъекторы для введения в ткани жидких веществ (вакцин) без применения игл.

Интраартериальные инъекции применяют для введения антибио-тиков и других лекарственных веществ при лечении острых гнойно-некротических процессов в дистальном отделе конечностей. Практически у крупных животных относительно легко сделать инъекцию в срединную артерию. Раствор вводят иглой Боброва на 2—3 см ниже локтевого сустава, позади заднего края лучевой кости, слегка вытянув конечность животного вперед. В намеченном участке ощущают пульсацию артерии. Пальцем левой руки прижимают сосуд ниже места пункции, а правой вкалывают иглу сверху вниз под углом 40—60 °, прокалывая кожу, поверхностную и глубокую фасцию предплечья. Появление из иглы пульсирующей струи свидетельствует о правильном положении иглы. Чтобы избежать выскальзывания иглы пи сосуда, ее присоединяют к шприцу резиновым

шлангом. В настоящее время практикуют инъекции в общую сонную артерию, заднюю аорту и другие артерии.

Внутрибрюшинные инъекции. Брюшнна обладает резорбционной способностью, особенно в области диафрагмы; за короткий срок брюшина может впитать количество жидкости, равное 1/10 массы тела животного. Поэтому введение лекарственных веществ в ее полость может заменить внутривенную инъекцию. Чаще всего операцию выполняют на свиньях (раствор наркотических веществ, антибиотики) и иногда на крупном рогатом скоте при пироплазмидозах, начинающемся перитоните и др.

У свиней, собак и кошек раствор инъецируют несколько сбоку от белой линии, между пупком и лонным сращением. Свинью фиксируют за тазовые конечности головой вниз Крупным свиньям раствор вводят в области средней части подвздоха слева, при этом над животного приподнимают. Ткани прокалывают иглой с мандреном, имеющим скошенное острие, или троакаром. Чтобы избежать по-вреждения внутренностей, игле придают косое направление и после извлечения мандрена ее продвигают еще на глубину 1—2 см.

Внутрисердечные инъекциираствора солянокислого адреналина применяют при остановке сердца (наркоз, синкопэ у новорожденных). Инъекцию делают в ближайшие 5 мин, если другие предпринятые меры оказались безуспешными. Животное фиксируют на правом боку. Иглу длиной 5—10 см (в зависимости от вида животного) вкалывают в промежуток между 5-м и 6-м ребрами как можно ближе к грудине на глубину 3—5 см и инъецируют раствор адреналина 1:1000 в левый желудочек (0,25 — 1,0 мл мелким животным и до 10 мл крупным).

Внутрикостные инъекциичаще применяют у свиней, когда внут-ривенное введение по тем или иным причинам неосуществимо. Свиньям старше пяти месяцев раствор инъецируют в грудную кость, молодняку — в верхний эпифиз плечевой или большеберцовой кости, а также в бугры пяточной, подвздошной и седалищной костей. Для внутрикостных инъекций употребляют укороченную вдвое иглу Бира, иглу Кассирского

Интрастернальную инъекциюпроще и безопаснее произвести в рукоятку или в первый и второй сегменты грудной кости. В каждом сегменте грудной кости между наружным и внутренним кортикальными слоями имеется спонгиозный слой — красный костный мозг. На распиле он имеет толщину: и рукоятке 2—6 см, в первом сегменте 2,5 см, во втором 1,1 см, в третьем 0,4 см. Наружная и внутренняя кортикальные пластинки толщиной от 0,1 до 0,15 см. Вся масса спонгиозного слоя представляет собой костные трабекулы и сеть капилляров венозной системы, которая способна принимать вводимую жидкость непосредственно в общее кровяное русло. Таким образом, внутрикостная инъекция представляет собой разновидность внутривенной. Свинью фиксируют в правом боковом положении; чтобы сделать прокол рукоятки, иглу вкалывают на боковой поверхности ее, от-ступя от хорошо прощупываемого края рукоятки на 3—4 см, что примерно совпадает с местом прикрепления 1-го ребра. Конец иглы должен быть направлен к центру рукоятки. После прокола мягких тканей игла с мандреном упирается в кость. Сверлящими движениями перфорируют наружный кортикальный слой и продвигают иглу на 0,6—0,7 см в губчатую часть кости. Затем извлекают мандрен и, приставив шприц, при некотором усилии вводят раствор. При инъекции в один из сегментов грудной кости укол производят несколько сбоку от срединной линии и поступают так же, как при инъекции в рукоятку. Следует быть осторожным, чтобы не перфорировать внутреннюю кортикальную пластинку. Если поступление раствора затруднено, кончик иглы несколько смещают, придавая ему не-болыпой наклон.

Инъекция в плечевую кость. Трубчатые кости у молодых животных на всем своем протяжении внутри имеют красный костный мозг, и только с пяти месяцев начинает появляться белый костный мозг сначала в средней ее части, а затем доходит до эпифизов. В 9-месячном возрасте красный костный мозг остается только в пределах эпифизов. С возрастом утолщается и кор-тикальный слой кости. Иглу вкалывают на 1 см кзади и кверху от дельтовидной шероховатости плечевой кости на глубину 2—3 см, в зависимости от величины и упитанности животного. Толщина кортикального

слоя здесь равна 0,1—0.2 см. После его прокола происходит как бы провал иглы и дальнейшее относительно легкое продвижение ее. В это время ощущается характерный хруст прободения трабекул губчатого вещества кости. После извлечения мандрена иногда из иглы появляется капля крови. Инъекция осуществляется относительно легко. Примерно так же инъецируют и в другие вышеупомянутые кости.

Кровопускание — одна из самых распространенных операций. Применяют его с диагностической целью для постановки серологических реакций, с промышленной целью у гипериммунных животных на биофабриках для получения лечебных сывороток и с лечебной целью (интоксикация, ревматическое воспаление копыт, острая гиперемия мозга, отек легких и др.). В зависимости от количества выпускаемой крови и вида животных употребляют различной толщины кровопускательные иглы с мандренамп: при массивном кровопускании игла должна быть с болыпим просветом (рис. 11). При массовом взятии крови у животных для диагностических целей пользуются специальным прибором, представляющим собой соединение иглы и пробирки, причем для каждого животного берут отдельную иглу. Повторно иглу можно употреблять только после тщательной ее стерилизации кипячением. Лечебные однократные дозы выпускаемой крови составляют: для крупных животных 2—6 л, мелкого рогатого скота 200—400 мл, свиней 200—600 мл, для собак 50—200 мл и кур 10—40 мл.

Кровь берут из тех же сосудов, в которые осуществляют инъекции и вливания, техника в основном та же. У свиней болыпое количество крови берут из сосудов хвоста в ампутации ножницами его кончика длиной 1,5—2 см. Перед хвост моют, выстригают на нем щетину и опускают в сосуд с юн водой, затем тщательно дезинфицируют. Кровь собирают в специальный сосуд. После кровопускания на кончик хвоста для остановки крово-пи надевают резиновое кольцо