правила забора мокроты для бактериоскопического исследования

поступающих на исследование в лабораторию

Дата иссле­дования	Порядковый номер	Фамилия, имя, отчество	Год рожде­ния	Пол	Адрес	Результат исследо- вания мокроты

 

Задание 6

Изучите тесты идентификации микобактерий туберкулеза и запишите их в дневник.

 

Задание 7

Изучите автоматизированные системы, используемые для диагностики туберкулеза, (см. наглядное пособие «Современные методы диагностики микобактерий туберкулеза») и запишите в дневник.

 

Оценка ___________

Подпись преподавателя ______________

Приложение № 1

правила забора мокроты для бактериоскопического исследования

Мокрота собирается в специальные стеклянные баночки емкостью около 50 мл с герметически завинчивающимися крышками, доставляется для исследования в лабораторию. Для сбора мокроты могут применяться также плевательницы из темного стекла с герметически завинчивающимися крышками, которые, как и баночки, используются многократно после мытья и стерилизации кипячением в течение не менее 30 минут. Необходимо использовать баночки с широким горлышком (диаметр не менее 35 мм), чтобы пациент мог легко собрать мокроту без контаминации наружной поверхности баночки. Мокроту можно собирать также в одноразовые плевательницы, которые после использования подлежат уничтожению. Посуда для сбора мокроты должна быть сделана из прозрачного материала, чтобы можно было определить количество и состояние собранного материала, не открывая крышку баночки.

Сведения о пациенте приводятся на бумажной этикетке, прикрепленной на наружную стенку баночки или плевательницы. В этикетке указывается фамилия, имя, отчество, год рождения, дата забора мокроты, адрес больного и наименование медицинского учреждения. На исследование направляются три пробы мокроты от каждого пациента. Лучше использовать утреннюю порцию мокроты.

Первая проба. Мокрота собирается при первичном обращении пациента в больницу или поликлинику (утром) под наблюдением медицинского работника.

Вторая проба. Мокрота собирается больным в тот же день с промежутком в 1,5-2 часа после взятия первой пробы в присутствии медицинского работника.

Третья проба. Мокрота собирается самим больным утром следующего дня и доставляется им в лабораторию.

Можно рекомендовать следующую методику сбора трех образцов мокроты:

первый образец - при первичном обращении больного в медицинское учреждение;

второй образец, собранный рано утром на следующий день после первого обращения больного;

третий образец - непосредственно в медицинском учреждении, когда пациент принесет на исследование собранный утром второй образец мокроты.

Во время продуктивного кашля образуется аэрозоль, содержащий туберкулезные микобактерий. В целях обеспечения мер безопасности при откашливании мокроты пациентом и предупреждения инфицирования потенциально заразными аэрозолями медицинского персонала сбор мокроты должен осуществляться в специально оборудованном помещении, оснащенном бактерицидными лампами, локальной вытяжной вентиляцией, в присутствии медицинского персонала с обязательным проведением инструктажа о правилах сбора мокроты. Если условия этого не позволяют, то сбор мокроты проводят вне помещения (на открытом воздухе) или в помещении, где нет других людей, под контролем медицинского работника. В любом случае нельзя собирать мокроту в замкнутых помещениях.

Собранные образцы мокроты от одного пациента не объединяют в одном сосуде, а направляют лабораторию с указанием сведений о пациенте для каждой пробы.

Сразу после взятия материал для исследования должен быть доставлен в лабораторию. Если транспортировка откладывается, собранную мокроту следует хранить в холодильнике при 4°С не более 2-х дней или в консерванте (3-5 суток)

Для хранения и перевозки мокроты необходимо использовать специальные, контейнеры, металлические биксы.

Биксы, в которых находятся плевательницы с мокротой, до перевозки следует хранить в холодильнике. Если у больного мало мокроты, можно использовал мокроту, собранную в течение суток, при условии, что она будет храниться в холодильнике. При этом ни в коем случае нельзя допускать ее замораживания

При необходимости посева мокрота собирается в стерильную плевательницу и сохраняется в холодильнике не более 1 дня

При отсутствии возможности доставить мокроту в медицинское учреждение можно приготовить хорошо зафиксированные мазки и переправить их в лабораторию в ряде случаев, когда больному трудно откашлять мокроту, прибегают к специальным методам, например стимуляции выделения мокроты. Мокрота, собранная после специальной стимуляции, по внешнему виду напоминает слюну поэтому такой направляют в лабораторию со специальной маркировкой («индуцированная мокрота»).

Меры безопасности при работе с инфекционным материалом

Каждый мед. работник отвечает за собственную безопасность и безопасность своих коллег по работе.

Весь персонал должен работать в медицинском халате, застегивающемся сзади, медицинском колпаке. При работе с инфекционным материалом необходимо пользоваться с резиново-клеенчитым передником, резиновыми перчатками, точно выполнять технические приемы и соблюдать меры предосторожности, предусмотренные правилами исследования.

Матерчатые или бумажные лицевые маски (например, хирургические) не обеспечивают защиту медработника от вдыхания взвешенных в воздухе капельных частиц, содержащих инфекционный агент. (используют 8-ми слойную марлевую повязку.)

При работе с мокротой следует сводить к минимуму выполнение лабораторных манипуляций, которые создают инфицирующие аэрозоли (мельчайшие капельки мокроты). К появлению аэрозолей в лаборатории приводит:

Ø открывание плевательниц с мокротой, что особенно опасно в тех случаях, когда мокрота затекла и высохла между крышкой и стенкой плевательницы, или если мокроту взбалтывали пред открыванием плевательницы;

Ø приготовление мазков на предметных стеклах;

Ø прожигание бактериологических петель, используемых для переноса материала на стекло;

Ø попытки фиксировать над горелкой невысохший влажный мазок, что приводит к вскипанию и разбрызгиванию частичек материала.

В целях максимальной защиты лаборантов от заражения необходимо приготовление и фиксацию мазков проводить в настольном вытяжном шкафу.

Микроскопию мазков проводить отдельно от места приготовления и окраски мазков. В лаборатории необходимо иметъ раковину с проточной водопроводной водой, систему вытяжной вентиляции и использование бактерицидных лампы ультрафиолетового облучения.

Запрещается принимать пищу и курить за рабочим столом.

Манипуляции следует выполнять только на лотке, который необходимо стерилизовать каждый день после использования либо огнем, либо обработкой 5% раствором хлорамина (либо другим средством).

Во время приготовления мазков окна и двери должны быть закрыты. Случайно залитые или забрызганные заразным материалом места на столах, полу и пр. необходимо немедленно залить дезинфицирующим раствором и оставить его на месте в течение не менее 1 часа, включить вытяжную вентиляцию, покинуть комнату.

После прикосновения руками к заразному материалу необходимо немедленно их дезинфицировать. Это надо делать также перед уходом из лаборатории.

Поверхности столов и лотков смачиваются дезраствором и оставляются в таком состоянии на 6 часов, a затем промываются теплым 2% содовым раствором.

По окончании манипуляций с заразным материалом предметы подлежат немедленной дезинфекции (погружаются или заливаются 5% хлорсодержащим раствором на 4 часа). После окончания препарирования окна и двери должны быть открыты для проветривания.

Баночки или плевательницы с мокротой складывают в бак или ведро для обеззараживания. Лабораторную посуду, бывшую в употреблении, дезинфицируют путем кипячения в течение 30 минут_с_момента закипания в мыльно-содовом растворе. Во время нагревания плевательницы должны быть полностью покрыты кипящей жидкостью. После кипячения лабораторную посуду моют для повторного использования. Возможна также дезинфекция лабораторной посуды путем автоклавирования или путем погружения в один из дезрастворов. Пинцеты, сушилки, мостики, кюветы обрабатывают пламенем или заливают дезинфицирующим раствором (5% раствор карболовой кислоты или 5% раствор хлорамина, или 2.5% активированный хлорамин).

Транспортировочные коробки или биксы очищаются ватными тампонам, пропитанными дезраствором.

После окончания работы перчатки персонала и пинцеты кипятят в течение 15 минут с момента закипания в кастрюле в 2% содовом растворе.

Халаты, полотенца. маски обеззараживают путем замачивания, в. 5% растворе хлорамина в течение 4 часов (5 литров раствора на 1 кг белья) или в 1% активированном растворе хлорамина в течение 2 часов. После этого белье кипятят около 30 минут, а затем стирают обычным способом.

примечание: вместо хлорамина используются любые дез. средства имеющиеся в лаборатории, которые обладают туберкулоцидным действием (время экспозиции дез. средства – см. наставление по применению данного дез. средства).

Приложение №2

ХРАНЕНИЕ И ТРАНСПОРТИРОВКА МАТЕРИАЛА

Для успешного выделения культуры возбудителя необходимо максимально сократить интервал от момента получения биологического материала до начала его иссле­дования. Поэтому полученные образцы следует направлять в лабораторию с минимальной задержкой. Если есть возможность хранить собранные пробы мокроты в холодильнике, то можно направлять их в лабораторию один раз в неделю. Однако другие виды биологического материала следует пересылать в лабораторию как можно быстрее.

Если транспортировка будет осуществляться при температуре окружающей среды, необходимо использовать химические консерванты. Удовлетворительные результаты культурального исследования могут быть получены при использовании следующих приемов:

v Смешать свежесобранный образец биологического материала с равным объемом 1 % раствора цитилпиридинхлорида в 2% растворе хлористого натрия. В этих условиях микобактерии туберкулеза сохраняют жизнеспособность до 7 дней, а рост контаминирующих микроорганизмов будет ограничен.

v Смешать свежесобранный образец биологического материала с безводным карбонатом натрия - из расчета 50 мг реактива на 2 мл биологической жидкости.

v Если задержка материала до отправки его в лабораторию на культуральное исследование составит менее 24 часов, собранный материал можно смешать с равным объемом 23% раствора трехзамешенного фосфорнокислого натрия.

Однако ни один из перечисленных методов консервации не является оптимальным, поэтому для получения хороших результатов следует направить собранные пробы в бактериологическую лабораторию как можно быстрее.

Требования и рекомендации по безопасной транспортировке биологического материала изложены в различных национальных и международных практических руководствах и инструкциях. Кроме того, в большинстве стран у почтовых работников и транспортников, включая Ассоциацию авиаперевозок, имеются специальные инструкции по перевозке таких материалов.

Единым требованием является то, что биологический материал должен быть надежно упакован для предупреждения его вытекания из контейнера при ударах, повышении давления и в других ситуациях. Прежде всего, биологический материал, пересылаемый по почте или авиатранспортом, помещают в стандартный прочный герметично закрытый контейнер, который затем упаковывается во второй контейнер, сделанный из металла, дерева или прочного картона и содержащий достаточное количество абсорбирующего материала (чтобы при повреждении внутреннего контейнера вытекающая жидкость полностью абсорбировалась этим материалом). Для пересылки биологического материала в другие страны эта коробка должна быть соответствующим образом упакована в наружный контейнер, а пересылка должна быть надлежащим образом оформлена в почтовом и транспортном управлении.

В бактериологические лаборатории, проводящие исследования на туберкулез, чаще всего направляют пробы мокроты, для пересылки которых необходимо иметь специальные транспортные ящики, изготовленные из дерева или металла должно помещаться от 20 до 30 флаконов с мокротой, которые устанавливают вертикально, чтобы предупредить вытекание биологического материала. Такие ящики должны плотно закрываться крышкой, желательно - на замок. При транспортировке ящики должны храниться в наиболее холодном месте и быть защищены от солнечных лучей.

Бланки направлений на лабораторное исследование должны находиться отдельно от флаконов с материалом. Для каждого транспортного контейнера должен быть подготовлен сопроводительный документ, в котором приводят сведения о пациентах и материале, взятом от них. Перед отправкой материла из лечебного учреждения должно быть проверено следующее:

Ø количество флаконов в ящике и указанных в сопроводительном документе совпадает;

Ø идентификационный номер каждого флакона соответствует номеру в сопроводительном документе;

Ø сопроводительный документ содержит всю необходимую информацию о каждом пациенте;

Ø в сопроводительном документе указана дата отправки и приведены данные о медицинском учреждении.