Блок информации к занятию для самостоятельной работы

Приложение 1:

 

 

Рис. 1. Схема дивергенции возбуждения в сети нейронов.

 

 

Рис. 2. Схема конвергенции возбуждений в сети нейронов.

 

Рис. 3. Схема мультипликации возбуждения в сети нейронов.

 

 

 

 

Рис. 4. Схема реверберации и пролонгирования возбуждения в сети нейронов.

 

 

Рис. 5. Схема рефлекторной дуги спинального моносинаптического (коленного) рефлекса. Стрелками на схеме показано направление распространения возбуждения от рецепторов – мышечных веретен (2) до эффектора (четырёхглавой мышцы).

 

 

Рис. 6. Схема рефлекторной дуги спинального полисинаптического (защитного) рефлекса. Стрелками на схеме показано направление распространения возбуждения от рецепторов кожи (1) до эффектора (сгибателя конечности).

 

 

Рис. 7. Схема торможения на мембране по типу гиперполяризации

 

 

Рис. 8. Схема торможения на мембране по типу длительной деполяризации

 

А Б

 

 

Рис. 9. Схемы торможения в синапсах (А - постсинаптическое, Б - пресинаптическое).

 

 

А Б В

 

 

Рис. 10. Схемы торможения в локальных сетях нейронов: А – возвратное: 1- коллатераль возбуждающего нейрона к тормозной клетке, 2 – возбуждающая вставочная клетка; Б – латеральное; В - торможение торможения; Б, В - черным цветом обозначены тормозные клетки.

 

 

 

Рис. 11. Схема реципрокного торможения: 1 – афферентный путь от мышечных веретён (интрафузальных рецепторов) сгибателя; 2 – эфферентный путь от мотонейрона сгибателя; 3 - вставочная тормозная клетка в спинном мозге; 4 – эфферентный путь от мотонейрона разгибателя.

Рис. 12. Схема центрального (Сеченовского) торможения: 1 - линия разреза зрительных бугров промежуточного мозга, 2 – область ретикулярной формации ствола, 3 – вставочная тормозная клетка в спинном мозге; 4 – схема контактов клетки Реншоу с мотонейроном.

 

 

 

Рис. 13. Схема исследования парабиоза в опыте Н.Е. Введенского.

 

А Б

 

Рис. 14. Схема парабиотического торможения: А - перевозбуждение нервной клетки; Б - парабиоз и его фазы: I – амплитуда раздражителей; II – Реакция икроножной мышцы нервно-мышечного препарата до развития в участке нерва торможения; III, IV, V – фазы парабиоза

 

 

Приложение 2: Методы исследования ЦНС и их краткая характеристика.

1. Экспериментальный метод разрушения, экстирпации различных отделов ЦНС или перерезки ствола мозга, проводящих путей. Выпадение определенной функции - доказательство функционального значения этих отделов спинного и головного мозга, характера их взаимодействия.

2. Метод электролитического разрушения позволяет изолировать функциональное влияние узко локализованных нервных центров. Известен целый ряд тяжелых хронических заболеваний ЦНС, лечение которых сочетается с локальным разрушением определенных подкорковых ядер.

3. Метод раздражения (химического, механического, электрического и т.д.) позволяет наблюдать возникновение, особенности проявления и распространения основных нервных процессов организма. Например, электростимуляция с помощью «вживленных» электродов мотивационных центров вызывает определенное эмоционально окрашенное поведение.

4. Микроэлектродный метод регистрации импульсной активности отдельных нервных клеток. Метод позволяет изучить механизмы возбуждения и торможения нейронов, характер ответной реакции на качественно различные раздражители, принципы кодирования информации в ЦНС.

5. Метод микроионофореза - подведение к нейронам различных химических веществ через многоканальные микроэлектроды для анализа химической природы передачи возбуждения, закономерностей обработки информации различного биологического качества, механизмов включения нейронов в определенные функциональные системы приспособительных реакций.

6. Стереотаксический метод фиксации черепа в определенной системе координат позволяет определить локализацию исследуемых структур мозга. По расчетным координатам вводятся в подкорковые структуры стимулирующие, отводящие электроды и микропипетки. Коррекцию погружения электродов для исключения опасности их отклонения от расчетных координат проводят на основании электрофизиологического контроля функциональных особенностей тех или иных центров, расположенных в глубине мозга.

 

 

Рис. 15. Схема электрофизиологической установки для регистрации вызванных потенциалов. Голова животного зафиксирована в стереотаксисе.

 

7. Метод вызванных потенциалов - регистрация биоэлектрической активности определенных структур мозга при кратковременной стимуляции экстеро - или интерорецепторов. Этот метод применяется для изучения локализации сенсорных систем мозга, онто- и филогенеза отделов ЦНС, функционального электрофизиологического контроля в нейрохирургии.

 

 

 

Рис. 16. Схема электрофизиологической установки для регистрации вызванных потенциалов. Схема координат исследованных центров мозга (слева) и варианты вызванных потенциалов (справа). Красной точкой обозначен фокус максимальной активности, в которой зарегистрирован первичный ответ (10).

 

8. Метод регистрации суммарной биоэлектрической активности коры больших полушарий (ЭЭГ) и подкорковых структур (субкортикография) с помощью «вживленных» электродов. Характер спонтанной ЭЭГ определяется функциональным состоянием нервной ткани, уровнем протекающих в ней обменных процессов. Например, нарушение кровоснабжение, гипоксия или глубокий наркоз приводят к подавлению биоэлектрической активности коры больших полушарий.

 

Рис. 17. Схема электрофизиологической установки для регистрации электроэнцефаллограммы (слева). Основные ритмы ЭЭГ (справа)

 

Таблица 1. Характеристика основных ритмов ЭЭГ

 

Название ритма ЭЭГ	Частота	Условия формирования
Бета ритм	14-30 гц	В состоянии активного бодрствования; во время фазы быстрого (парадоксального) сна
Альфа ритм	8-13 гц	У бодрствующего человека в полном покое при отсутствии зрительных и слуховых раздражителей; во время дремоты.
Тета ритм	4-7,5 гц	Во время неглубокого медленного (ортодоксального) сна.
Дельта ритм	0,5-3,5 гц	Во время глубокого медленного (ортодоксального) сна.